ОСНОВЫ БИОЛОГИИ РЫБ 14 страница

Место укола протирают от слизи сухим ватным тампоном, а по­том смоченным 70°-ным спиртом. При взятии крови из сердца дела­ют укол между грудными плавниками в месте прохождения белой линии под углом 90° до упора в позвоночник. При взятии крови из хвоста делают укол позади анального плавника, предварительно удалив его ножницами. Вращательными движениями иглы или пас­теровской пипетки прокалывают кожу и под прямым углом продви­гают их до упора в позвоночник. Кровь в обоих случаях легко идет по капилляру пипетки.

Для определения количества эритроцитов и лейкоцитов кровь на­бирают в смеситель меланжера, используемого для подсчета эрит­роцитов млекопитающих, до метки 0,5 или 1 и насасывают жид­кость для окрашивания и разведения крови до метки 101 (раствор А: нейтральрот — 25 мг; хлорид натрия — 0,6 г, вода дистиллирован­ная — 100 мл; раствор Б: кристаллвиолет — 12 мг, натрий лимонно­кислый — 3,8 мг; формалин — 0,4 мл, вода дистиллированная — 100 мл). Раствор А набирают до половины расширения смесителя, раствор Б — до метки 101. Готовят эти растворы непосредственно перед исследованием; хранить их можно в холодильнике не более 1 нед. Под действием растворов ядра лейкоцитов окрашиваются в фиолетово-оранжевый цвет, эритроцитов — в синий цвет; видны контуры клеток.

После наполнения снимают резиновую трубку со смесителя, захватывают его между большим и средним пальцами и сильно встряхивают 2—5 мин, после чего выпускают из капилляра 3 капли жидкости, а 4-й каплей заряжают счетную камеру.

Принцип метода сводится к подсчету форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов) в камере Горяева. Сначала под малым увеличением микроскопа находят сетку и устанавливают равномерность распределения клеток, а затем подсчитывают их. Эритроциты считают в 5 квадратах (80 малых квадратов), располо­женных по диагонали камеры Горяева. В каждом малом квадрате учитывают эритроциты, находящиеся внутри его, и те, которые ка­саются или лежат на его верхней и левой линиях.

Количество эритроцитов определяют по формуле

т •40007 80 '

где J— число эритроцитов в 1 мкл; т — общее количество клеток в 80 малых квад­ратах; у — степень разведения крови.

Лейкоциты подсчитывают в 25 больших квадратах, разделенных на малые (400 малых), и определяют по формуле

т-АШу 400 >

где X— число лейкоцитов в 1 мкл; т — общее количество лейкоцитов; у — степень разведения крови; 400 — число просмотренных малых квадратов.

Мазки крови окрашивают по Романовскому — Гимзе или по Па- пенгейму. В первом случае мазки после подсушивания фиксируют метанолом или спирт-эфиром (1:1). Раствор краски разводят дис­тиллированной водой (1—2 капли краски на 1 мл воды) и подслаи­вают его под предметные стекла, положенные мазком вниз, или красят в контейнерах. Время окраски 30—60 мин. При окраске по Папенгейму вначале нефиксированные мазки помещают в краси­тель-фиксатор по Май-Грюнвальду на 3 мин, промывают их дис­тиллированной водой, а затем окрашивают краской Романовско­го—Гимзы, как в первом случае. После окраски мазки обильно промывают водопроводной водой, высушивают и просматривают под иммерсией. Для выведения лейкограммы просчитывают 100— 200 лейкоцитов и рассчитывают соотношение клеток в процентах. Одновременно на мазках учитывают молодые формы эритроцитов, а также качественные изменения эритроцитов и лейкоцитов.

Уровень гемоглобина определяют по Сали или гемоглобин-циа- нидным фотометрическим методом. СОЭ учитывают в аппарате Панченкова.

ПАРАЗИТ0Л0ГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

При паразитологических исследованиях клиническому осмотру подвергают не менее 100 рыб из каждого пруда, паразитологическо- му вскрытию — мальков 25 экз., годовиков 10—15, рыб старших возрастов 5—10 экз.

Полное паразитологическое исследование рыб проводят по мето­дикам, разработанным В. А. Догелем, Э. М. Ляйманом, А. П. Мар- кевичем, и осуществляют в таком порядке: кожа, плавники, носо­вая полость, жабры, глаза, кровь, брюшная полость, сердце, пе­чень и желчный пузырь, селезенка, кишечник, почки и мочеточ­ники, плавательный пузырь, половые железы, мышцы, головной и спинной мозг, хрящевая ткань.

При наружном осмотре обращают внимание на наличие крово­излияний, язв, припухлостей, черных пятен на разных участках тела рыб, собирают всех видимых крупных эктопаразитов. Для об­наружения микроскопических организмов с поверхности тела, плавников соскабливают скальпелем слизь, помещают ее на пред­метное стекло, смешивают с несколькими каплями водопровод­ной воды и рассматривают при малом и среднем увеличениях мик­роскопа. В них находят жгутиконосцев, инфузорий, споровиков, моногеней.

Из носовых ямок пипеткой при многократном промывании их водой извлекают слизь, после чего микроскопируют. В слизи могут быть найдены инфузории, слизистые споровики, личинки трема­тод, пиявки,рачки.

Для исследования жаберного аппарата удаляют жаберные крыш­ки, вырезают жаберные дуги с жаберными лепестками и помещают на препаровальные стекла, смачивают водой и рассматривают пер­воначально под лупой. У мелких рыб жаберные дуги с лепестками, у крупных — отделенные от дуг лепестки компрессируют между дву­мя стеклами с добавлением воды. Микроскопически исследуют со­скобы тканей с жабр при малом и среднем увеличениях микроско­па. На жабрах можно обнаружить простейших, моногеней, яйца сангвиникол, рачков и др.

Глаза извлекают из глазных впадин, помещают на предметное стекло и вскрывают острыми ножницами белочную оболочку. Стекловидное тело и хрусталик компрессируют между двумя пред­метными стеклами и просматривают под микроскопом. При этом часто обнаруживают личинок диплостом.

Для исследований на наличие трипанозом и трипаноплазм кровь берут пастеровской пипеткой из сердца или хвостовой вены. Каплю крови наносят на обезжиренное предметное стекло и добавляют каплю лимоннокислого натрия (цитрата натрия) для предотвраще­ния свертывания, накрывают покровным стеклом, края которого замазывают вазелином, и микроскопируют.

Вскрывают брюшную полость дугообразным разрезом от аналь­ного отверстия к основанию левого грудного плавника. Боковую стенку отворачивают пинцетом и осматривают брюшную полость, обращая внимание на наличие ремнецов, нематод, а под серозными покровами и в брыжейке — на цисты и капсулы, содержащие личи­ночные стадии ленточных и круглых червей, миксоспоридий и др.

Сердце извлекают из сердечной полости, помещают на стекло, вскрывают, добавляют немного физиологического раствора и раз­давливают другим стеклом. В нем обнаруживают сангвиникол, цис­ты миксоспоридий и др.

Печень, поджелудочную железу, селезенку, почки исследуют по одинаковой методике. Сначала проводят наружный осмотр этих ор­ганов, а затем их разрезают на кусочки, компрессируют и микро- скопируют. Для исследования желчного и мочевого пузырей их по­мещают на стекло, вскрывают и собирают содержимое, после чего микроскопируют. В отдельных случаях делают соскобы со слизис­тых оболочек пузырей и также микроскопируют. Указанные органы являются местом обитания личинок гельминтов, многих видов спо­ровиков и других паразитов.

В плавательном пузыре исследуют стенки и полость, в которых могут быть обнаружены миксоспоридии, личинки филометроиде- сов.

Половые органы исследуют компрессорным методом. В них мо­гут локализоваться миксоспоридии, плероцеркоиды лентецов. В же­лудочно-кишечном тракте исследуют несколько отрезков. Обнару­женных крупных гельминтов собирают и помещают в физиологи­ческий раствор. Содержимое кишок соскабливают скальпелем и исследуют компрессорно.

Для исследования мышц с рыбы снимают кожу и осматривают мышцы снаружи. Могут быть обнаружены личинки возбудителя чернопятнистого заболевания. Затем острым скальпелем разрезают мышцы на тонкие пластинки толщиной 3—5 мм, которые просмат­ривают невооруженным глазом, а затем компрессируют и исследу­ют под микроскопом.

Головной мозг извлекают из черепной коробки и помещают на стекло, готовят раздавленные препараты. Мозговую ткань просмат­ривают под микроскопом частями, для исследования спинного моз­га перерезают позвоночник в задней части, в канал вводят проволоку, извлекают содержимое на стекло и исследуют компрессорно.

Исследование хрящевой ткани особенно важно в форелевых хозяйствах, неблагополучных по вертежу. Споры возбудителя это­го заболевания локализуются в слуховых капсулах и в межпозво­ночных хрящах. Отделяют кости и хрящи головы, очищают от мышц позвоночник, измельчают их на мелкие кусочки, смачива­ют водой и частями исследуют под микроскопом при среднем уве­личении.

Кроме исследования паразитов в живом и естественном виде на нативных препаратах проводят сбор и фиксацию материалов для последующей окраски, более подробного определения видов, при­готовления постоянных препаратов. Особенно это важно при обна­ружении редких или новых видов паразитов.

Простейших окрашивают по Романовскому — Гимзе, метилено- вым синим или железным гематоксилином. Для окраски трематод и цестод применяют квасцовый кармин. Моногенетических сосаль­щиков, миксоспоридий заключают в глицерин-желатину, замазы­вают сухие края покровных стекол бальзамом или черным лаком и хранят. Скребней и рачков также не красят, а для приготовления постоянных препаратов просветляют и заливают в бальзам. Окрас­ку и заключение паразитов рыб проводят по общепринятым в пара­зитологии методикам (см. специальные руководства).

ТОКСИКОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Отравления рыб диагностировать довольно сложно, так как они вызываются многочисленными ядовитыми веществами, часто возникают внезапно и проявляются недостаточно специфичными признаками. Поэтому диагноз ставят комплексно на основании данных токсикологического обследования водоема, клинико-ана- томических и разнообразных лабораторных исследований (см. схему II).

Токсикологическое обследование водоемов, проведение клини­ческих исследований и патологоанатомического вскрытия рыб про­водят теми же методами, что и при других болезнях рыб. В группу обязательных относят также органолептические, гидрохимические и химико-токсикологические исследования воды, грунта, органов рыб, беспозвоночных животных и растительности на наличие пред­полагаемого ядовитого вещества. В зависимости от показаний до­полнительно проводят биологические, гематологические, биохи­мические, бактериологические, вирусологические и паразитологи- ческие исследования. Они необходимы для установления характера патологического процесса и дифференциальной диагностики ток­сикозов от заразных болезней рыб.

При оценке результатов комплексных диагностических иссле­дований необходимо учитывать следующие особенности токсико­зов рыб.

Обследование водоемов проводят комиссионно, с участием спе­циалистов ветеринарной службы, органов рыбоохраны, санэпидем­станций и представителей местных администраций. При опросе очевидцев и личном осмотре водоемов важно определить участки наибольшей концентрации больных и погибших рыб, уточнить время появления, длительность и характер течения заболевания, видовой и возрастной состав пораженных рыб и других гидроби­онтов. Учитывают и обследуют при необходимости потенциальные источники поступления сточных вод: промышленные, комму­нально-бытовые и сельскохозяйственные объекты, применение пестицидов и удобрений и поступление их с поверхностным сто­ком. Обязательно анализируют сопутствующие экологические факторы: перепады температуры воды, осадки, паводки и другие метеорологические условия. На месте определяют температуру, рН, прозрачность, запах, окраску воды, содержание в воде кислоро­да, отбирают пробы для полного гидрохимического анализа.

По клиническому течению различают острые и хронические ток­сикозы, которые отличаются от других болезней рядом признаков.

Острые отравления возникают внезапно; для них характерны кратковременное течение, массовая гибель разных видов и возраст­ных групп рыб, ракообразных, моллюсков, лягушек и других гидро­бионтов. В клинической симптоматике их преобладает нервно-па- ралитический синдром, проявляющийся комплексом таких при­знаков, как нарушение возбудимости, потеря равновесия и рас-

Схема II. Диагностика отравлений рыб

I. Обследование водоема

2. Осмотр водоема

3. Учет всех видов, возрастных групп погибших рыб и других гидробион­тов, экономический ущерб и др.

4. Анализ документа­ции

П. Клинические исследования

исмотр 50—100

2. Изменение пове­дения рыб

3. Острота течения болезни

4. Выявление симптомо- комплекса

III. Патологоанатомичес­кое вскрытие рыб

1. Вскрытие 15—20 рыб разных видов

2. Трупное окоченение, время гибели рыб

3. Комплексы измене­ний (наружных и внутренних)

4. Отбор и фиксация проб органов или це­лых рыб для химичес­ких и гистологических исследований

ГУ. Органолептические и биологические иссле­дования

1. Специфический запах ядов в воде и органах рыб

2. Проба варки мяса рыб

V. Лабораторные ис­следования

1. Химический анализ воды, грунта, гидро­бионтов на наличие токсикантов

2. Гематологические исследования

5. Учет потенциаль­ных источников загрязнения

6. Метеорологические данные

7. Отбор проб воды, грунта для химичес­ких исследований

ЗАКЛЮЧЕНИЕ (диагноз)

стройство координации плавания рыб, тремор мускулатуры и судо­рожное состояние, полная потеря рефлексов, депрессия и агония. Обращают внимание на последовательность этих стадий и зависи­мость проявления симптомов от тяжести отравления.

Хронические токсикозы отличаются длительным течением, со­провождаются постепенной гибелью рыб и проявляются чаще в стертой форме или бессимптомно. Для лабораторной диагностики используют показатели, отражающие избирательное действие ядо­витых веществ. Например, для отравления фосфорорганическими и некоторыми карбаматными пестицидами характерно сильное уг­нетение активности ацетилхолинэстеразы (АХЭ) крови и головного мозга. Производные мочевины, гербициды группы 2,4-Д вызывают гипохромную или гемолитическую анемию, а нитриты и анили- ды — метгемоглобинемию. Полезны бывают и другие биохимичес­кие показатели, диагностическая ценность которых различна.

Патологоанатомическому вскрытию подвергают погибших и живых рыб с клиническими признаками отравления. В первую очередь обращают внимание на трупное окоченение и степень разложения трупов, по которым определяют примерные сроки ги­бели рыб. Следует учитывать, что скорость разложения трупов за­висит от температуры воды и наиболее четко определяется по со­стоянию жаберного аппарата. При температуре 20 °С изменения жабр происходят примерно в следующие сроки: в начальной ста­дии (1—6 ч) бледнеют кончики жаберных лепестков, через 10—12 ч жабры приобретают серо-белую окраску, рисунок их сглаживает­ся, а через 1 —2 сут мягкие ткани легко соскабливаются до обнаже­ния жаберных лучей. Трупы рыб в это время размягчаются, мыш­цы легко отделяются от костей.

Трупное окоченение гораздо сильнее выражено и быстрее насту­пает при отравлении нервно-паралитическими ядами (пестицида­ми, органическими соединениями), чем веществами наркотическо­го и местно-раздражающего действия. Кислоты и тяжелые металлы в высоких концентрациях коагулируют слизь. Она становится гус­той, творожистой, плохо отделяется. Щелочи, щелочно-земельные металлы, наоборот, разжижают ее. Она легко снимается или смыва­ется с тела рыб.

При острых отравлениях ядами местно-раздражающего дей­ствия (щелочами, кислотами, тяжелыми металлами, аммиаком, хлором и др.) на поверхности тела, плавниках, жабрах часто встре­чаются точечно-пятнистые или полосчатые кровоизлияния, помут­нение и даже разрушение роговицы глаз. В то же время резорбтив- ные яды не вызывают значительной местной реакции. Им свой­ственно общее действие, которое выражается нарушением крово­обращения, застойной гиперемией, цианозом, дистрофическими изменениями и иногда отеком внутренних органов. Но выраженное пучеглазие, ерошение чешуи и особенно брюшная водянка (асцит) встречаются гораздо реже, чем при инфекционных заболеваниях.

Важно также заметить, что при большинстве токсикозов по­вреждаются жабры в разных формах: застой крови, цианоз, крово­излияния, токсический отек, дистрофия и некроз поверхностного эпителия и глубоких тканей. Характер и тяжесть этих изменений зависят от агрессивности химического вещества и его концентра­ции.

Картина хронических отравлений менее характерна, чаще про­является снижением упитанности рыб, анемией жабр, внутренних органов, атрофией печени, гидратацией мускулатуры и др. Для уточнения особенностей патологических процессов и дифферен­циации токсикозов от других болезней проводят гистологические исследования.

Органолептические и биологические исследования важны для групповой диагностики токсикозов или доказательства токсично­сти воды и патологического материала из органов рыб. Следует помнить, что многие пахучие вещества можно обнаружить в воде и органах по запаху примерно на уровне токсических концентраций для рыб. Силу запаха определяют органолептически в воде (после подогревания) и мясе рыб (пробой варки). Для этого мелко наре­занные кусочки мяса или органов (около 100 г) заливают двойным количеством воды и кипятят 5 мин в колбе, прикрытой стеклом. За­пах паров проверяют сразу после закипания воды и в конце пробы. Специфический запах мяса хорошо ощущается при наличии фено­ла и его хлорпроизводных, циклических углеводородов, нефти и нефтепродуктов, смол, эфирных масел, многих пестицидов и дру­гих веществ.

Для доказательства токсичности загрязненной воды ставят био- пробы непосредственно в водоемах (рыбная проба), устанавливая в них садки с чувствительными видами рыб (верховка, окунь, фо­рель и др.). Подобные опыты с водой из водоемов проводят также в аквариумах или бассейнах с различными разбавлениями сточных вод. Биотестирование токсичности воды проводят также постанов­кой лабораторных опытов на чувствительных тест-объектах (даф­ниях, инфузориях тетерахимена или стиланихия) по ГОСТ СССР ОКСТУ 0017 «Вода. Определение токсичности на инфузориях» (1990 г.); «Методическое руководство по биотестированию воды. РД 118-02-90» (1991 г.).

Токсичность нативного патологического материала или экс­трактов ядов из органов рыб определяют на лабораторных живот­ных (рыбах, мышах, крысах, кошках, лягушках, насекомых) путем скармливания, парентерального введения или прямого контакта с патматериалом. Выбор животных и методика постановки биопробы зависят от характера предполагаемого ядовитого вещества. Напри­мер, при подозрении на пестицидное загрязнение опыты ставят на комнатных мухах, дрозофилах, комарах.

Лабораторные исследования составляют основу для постановки окончательного диагноза. Однако их результаты во многом зависят от правильности отбора проб материала, выбора объектов анализа и обоснованности предварительного диагноза. Лабораторные иссле­дования воды, патологического материала, грунта, гидробионтов проводят утвержденными официальными методами.

Материал, поступивший в лабораторию, делят на две части: одну исследуют сразу, а другую хранят в холодильнике или в консервиро­ванном виде для повторных анализов.

При проведении химико-аналитических исследований рыб не­обходимо учитывать места локализации ядовитых веществ и их ме­таболитов.

При невозможности набрать необходимую массу проб вышепе­речисленных органов исследуют сборные пробы: целые тушки мел­ких рыб, а у крупных экземпляров — отдельно пробы жира, парен­химатозных органов, скелетной мышечной ткани и жабр. В случае получения отрицательных или сомнительных результатов анализа воды и рыбы дополнительно исследуют грунт, бентос, зоопланктон или водные растения, которые избирательно концентрируют мно­гие токсические вещества.

Гидрохимические исследования позволяют оценить гидрохими­ческий режим водоема, учесть или исключить роль экологических факторов и органических загрязнений в гибели рыб. Они включают проведение полного гидрохимического анализа, принятого в рыбо­водстве. При оценке отклонений гидрохимических показателей следует руководствоваться рыбоводными нормативами.

В заключении по лабораторным исследованиям должны быть указаны химические вещества и их количество, возбудители болез­ней и изменения в организме, найденные и не обнаруженные при­меняемыми методами анализа.

Для постановки окончательного диагноза на отравление решаю­щее значение имеет обнаружение ядовитых веществ или их метабо­литов в воде, органах рыб, биологических объектах, грунте, а также выявление специфических изменений в организме рыб. Однако из- за большого разнообразия химических веществ, поступающих в во­доем, при оценке полученных результатов необходим дифференци­рованный подход.

При оценке результатов химико-токсикологических исследова­ний учитывают стойкость, миграционные способности, пути мета­болизма, кумулятивные свойства и фоновое содержание обнару­женного вещества во внешней среде. Так, тяжелые металлы (медь, цинк, молибден, кобальт и др.) входят в состав тела рыб как микро­элементы, а также могут обнаруживаться в воде и рыбе в разном ко­личестве в зависимости от геохимической провинции. Стойкие хлорорганические ядохимикаты накапливаются в органах рыб, а быстроразлагающиеся фосфорорганические соединения и др. об­наруживаются в небольшом количестве или в виде метаболитов.

При многих токсикозах важное диагностическое значение име­ют косвенные показатели. Например, при загрязнении водоемов коммунально-бытовыми и животноводческими стоками, мине­ральными удобрениями, сточными водами, богатыми органичес­кими веществами, ведущее место занимает нарушение гидрохи­мического режима. Органические вещества вызывают резкий де­фицит кислорода, изменение рН, увеличение в воде количества аммиака, сероводорода, нитритов и нитратов, а также окисляемос­ти воды и т.д.

Нередко решающее значение для диагностики токсикоза имеют подробно изученные обстоятельства гибели рыб, сообщения оче­видцев, сведения о наиболее характерных признаках отравления, материалы обследования источников загрязнения, а также исклю­чение заразных болезней рыб.

Глава 15

ОБЩИЕ ПРОФИЛАКТИЧЕСКИЕ И ОЗДОРОВИТЕЛЬНЫЕ МЕРОПРИЯТИЯ В РЫБОВОДНЫХ ХОЗЯЙСТВАХ

В современных условиях высокой интенсификации рыбоводства невозможно достигнуть максимальной рыбопродуктивности водо­емов, получить прибыль и обеспечить высокое качество живой рыбы без постоянной заботы об охране здоровья выращиваемых рыб. Она складывается из проведения профилактических, ветери- нарно-санитарных, оздоровительных и лечебно-профилактичес­ких мероприятий.

С учетом специфики рыбохозяйственных водоемов — их боль­ших площадей и сложного контроля за средой обитания рыб, в ры­боводстве особенно важно соблюдать известное правило, что забо­левание легче предупредить, чем лечить. Поэтому в обеспечении их эпизоотического благополучия и выращивании доброкаче­ственной продукции первостепенную роль играет профилактика. Оздоровительные и лечебные мероприятия применяются как вы­нужденная мера, часто бывают трудоемки и малоэффективны. Правильность выбора тех или иных мероприятий основывается на знании общей биологии и патологии рыб, этиологии, закономер­ностей возникновения, течения и проявления разных болезней, на правильной их диагностике, а также учете специфики конкретно­го рыбоводного хозяйства или водоема.

ПРОФИЛАКТИЧЕСКИЕ И ВЕТЕРИНАРНО-САНИТАРНЫЕ МЕРОПРИЯТИЯ

В рыбоводных хозяйствах независимо от их санитарно-эпизо- отического состояния проводится комплекс профилактических и ветеринарно-санитарных мероприятий, которые включены в общий технологический рыбоводный процесс (схема III). Он включает три основных направления работ: создание оптималь­ных зоогигиенических условий выращивания рыб; предупрежде­ние заноса и распространения заразных болезней; мероприятия

Схема III. Общие профилактические мероприятия в рыбоводных хозяйствах

Создание оптимальных зоо- шгиенических условий при выращивании рыб

1. Выполнение ветеринар- но-санитарных правил при строительстве и эксплуатации рыбовод­ных хозяйств

2. Создание оптимального гидрологического и гид­рохимического режимов в водоемах

3. Мелиорация и профи­лактическое летование прудов

4. Соблюдение биотехно­логии выращивания рыб:

а) выращивание здорового стада производителей и рыбопосадочного мате­риала

б) соблюдение оптималь­ных плотностей посадки рыб в водоемы

в) обеспечение полноцен­ного кормления рыб

г) повышение естествен­ной рыбопродуктив­ности прудов

5. Проведение просвети­тельской работы по про­филактике болезней рыб

Предупреждение заноса

и распространения заразных болезней рыб

1. Контроль эпизооти­ческого состояния водоемов

2. Ветеринарный надзор за перевозками рыб

3. Профилактическое карантинирование рыб

4. Предупреждение рас­пространения возбу­дителей болезней рыб внутри рыбоводных хозяйств

5. Профилактическая дезинфекция и дезин- вазия прудов и других емкостей, орудий ло­ва, вспомогательных средств

6. Профилактические обработки рыб

7. Сбор и утилизация трупов погибших рыб независимо от причи­ны

Мероприятия до профилак­тике незаразных болезней и токсикозов рыб

1.Постоянный контроль и коррекция темпера­турного, газового и гидрохимического ре­жимов в водоемах

2.Соблюдение правил и сроков хранения, регу­лярный контроль кор­мов на их доброкачест­венность, токсичность и др.

3.Меры по профилактике отравлений рыб:

а) соблюдение регламен­тов по загрязнению водоемов

б) проведение водоохран­ных мероприятий по недопущению загрязне­ния их пестицидами, удобрениями, сточны­ми водами предприя­тий

по профилактике незаразных болезней и токсикозов рыб. С уче­том вышесказанного мы при подготовке разделов по биологии рыб и основам рыбоводства изложили основные требования и правила по созданию оптимальных зоогигиенических условий среды обитания (см. гл. 3), соблюдению биотехнологии выращи­вания рыб (см. гл. 4), кормлению рыб, удобрению и мелиорации прудов (см. гл. 8), а также специфических мероприятий в тепло- водных, форелевых, аквариумных хозяйствах (см. гл. 9,10). В на­стоящей главе рассмотрим подробнее общие профилактичес­кие мероприятия, обязательные для всех рыбоводных хозяйств.

СОЗДАНИЕ ОПТИМАЛЬНЫХ ЗООГИГИЕНИЧЕСКИХ УСЛОВИЙ ДЛЯ РЫБ

1. Ветеринарно-санитарные требования при строительстве и экс­плуатации рыбоводных хозяйств. При выборе площадки для строи­тельства рыбоводных хозяйств необходимо соблюдать следующие требования. Их нельзя строить на территории скотомогильников, свалок бытового мусора, отходов химических и других промышлен­ных производств, радиоактивных веществ и т. п. Головные пруды и другие водоисточники не должны загрязняться сточными водами предприятий, должны быть благополучными по заразным болезням рыб и антропозоонозам. При сбросе коммунально - бытовых вод, стоков рыбоперерабатывающих предприятий, специальных рыбо­водных хозяйств (карантинных) или карантинных прудов, бассей­нов и животноводческих объектов воду следует обеззараживать от возбудителей заразных болезней животных и людей.

В производственных прудах и бассейнах предусматривают неза­висимое водоснабжение и устройство заградительных сооружений, препятствующих проникновению в них сорной рыбы и других гид­робионтов — переносчиков болезней рыб. Независимое водоснаб­жение означает то, что в каждый водоем вода поступает по магист­ральному водоподающему каналу, втекает по лотку и сбрасывается через водосбросное устройство в общий отводной канал, а не в со­седний пруд. Это исключает возможность переноса возбудителей болезней с водой. При зависимом водоснабжении, когда вода по­ступает по каскаду из одного пруда в другой, возбудители болезней и их переносчики легко переносятся с водой и перезаражают всю систему прудов.

Рыбопитомники внутри полносистемных хозяйств располагают компактно выше нагульных прудов, а карантинные пруды, бассей­ны, садки, наоборот, располагают в нижней части водоснабжающей сети, с тем чтобы в случае возникновения в них болезни исключить перенос возбудителей в производственные емкости. При строи­тельстве нескольких рыбоводных хозяйств и прудов на одной реч­ной системе питомники следует размещать у самого верховья или на притоках реки.

Ложе всех категорий прудов должно быть хорошо спланировано, очищено от кустарников, пней, с засыпанными бочагами и омутами и иметь сеть осушительных канав для стока воды и просушивания почвы. Это обеспечивает возможность проведения оздоровитель­ных мероприятий: летования прудов, дезинвазии и дезинфекции прудов. В период эксплуатации пруды должны использоваться толь­ко по их прямому назначению.