6 страница
Для диагностики воздействия загрязнений на морфологические характеристики применяются методы оценки флуктуирующей асимметрии.
Симметрия как вид согласованности отдельных частей живых организмов имеет общебиологическое значение. При работе с биологическими объектами в настоящее время используется классификация асимметрий (нарушений симметрии) по Л. Ван Валену, согласно которой они подразделяются на три типа:
1) направленная асимметрия, когда какая-то структура развита на одной стороне больше, чем на другой (например, сердце млекопитающих);
2) антиасимметрия – большее развитие структуры на одной из сторон (правша и левша в популяции человека);
3) флуктуирующая асимметрия – незначительные ненаправленные отклонения от строгой билатеральной симметрии.
Флуктуирующая асимметрия является результатом неспособности организмов развиваться по точно определенному плану. Различия между сторонами не являются генетически детерминированными и не имеют адаптивного значения. Выступая в качестве меры стабильности развития, флуктуирующая асимметрия характеризует состояние морфогенетического гомеостаза – способности организма к формированию генетически детерминированного фенотипа при минимальном уровне онтогенетических нарушений. Таким образом, флуктуирующая асимметрия может быть охарактеризована как одно из наиболее обычных и доступных для анализа проявлений случайной изменчивости развития.
Рядом научных исследований показано, что величина асимметрии реагирует на различные химические и физические факторы и может являться мерой нарушения развития организма. Флуктуирующая асимметрия – это один из общих показателей, характеризующий стабильность индивидуального развития, дающий оценку состояния природных популяций и зависящий от состояния среды. Величина флуктуирующей асимметрии и ее зависимость от определенных факторов может быть определена лишь на популяционном уровне.
Примером морфологического подхода в биотестировании является использование высшей водной растительности (ряски малой, элодеи канадской и др.) для оценки степени хронического токсического действия вод. Критерием токсичности воды является отклонение в скорости роста и внешнем виде (форма листьев, цвет поверхности листовых пластинок, наличие заболеваний) по сравнению с контролем.
Другим примером является оценка эмбриотоксичности природных и сточных вод, пищевых добавок, фармакологических препаратов, которая основывается на изучении аномалий развития амфибий. Эмбрионы и молодь гидробионтов являются уникальным объектом для исследования механизмов повреждений, вызванных токсичными агентами. Морфологические нарушения быстро визуализируются, что позволяет отследить ход их развития и получить сведения о характере повреждений [4].
Физиологический подход.Одна из наиболее важных характеристик, высокочувствительная к стрессовому воздействию среды, – энергетика физиологических процессов. Наиболее экономичный энергетический обмен имеет место лишь при строго определенных условиях среды, которые могут быть охарактеризованы как оптимальные.
Для характеристики энергетического обмена две величины являются фундаментальными: основной обмен и максимальный обмен. Основной обмен отражает минимальный уровень потребления энергии, необходимый для обеспечения нормального функционирования организма при отсутствии каких-либо внешних воздействий. Максимальный обмен соответствует предельному количеству энергии, которое организм способен выработать в случае необходимости. Разность между этими величинами представляет энергетический ресурс адаптации конкретного вида животных, поскольку основной и максимальный уровни обмена являются видоспецифическими величинами.
Интенсивность энергетического обмена аэробного организма может быть определена посредством измерения скорости потребления кислорода. При оптимальных условиях организм находится на самом низком энергетическом уровне, при любых негативных изменениях среды обитания потребность в кислороде будет увеличиваться.
Другая базовая характеристика, перспективная для оценки стрессовых воздействий, – темп и ритмика ростовых процессов.
Важной характеристикой физиологических процессов является поведенческая активность живых организмов. Например, тест с использованием инфузории спиростомы основан на оценке изменения скорости ее движения под воздействием химических раздражителей. Аналогичным образом изучение поведения дафний позволяет оценивать степень загрязнения воды: с увеличением концентрации токсикантов у дафний повышается активность, изменяется окраска и внешний вид органов, животные перестают питаться и в конечном счете погибают при значительных концентрациях токсикантов.
В качестве тест-функций применяются физиологические параметры пресноводных беспозвоночных гидробионтов разных уровней филогенеза.
Свойства внешней среды, и в частности гидросферы, проявляются в интенсивности воздействия на организм или популяцию отдельных факторов или их комбинаций. Вещества, поступающие в водоем антропогенным путем, могут оказывать регулирующее, трофическое, токсическое и информативное воздействие на гидробионты. При незначительных концентрациях в водоеме эти вещества можно выявить, оценивая физиологический статус гомеостатических показателей организма, которые могут изменяться при сдвигах в окружающей среде.
Наибольший интерес представляют типы поведения, относящиеся к эволюционно-универсальным реакциям, свойственным всем эукариотам, включая человека. К таким феноменам относятся: спонтанная двигательная активность как врожденная форма поведения и память – приобретенная форма поведения.
Целостное поведение животных рассматривается как лабильное взаимодействие врожденных и приобретенных элементарных реакций, необходимое для быстрой и эффективной адаптации к условиям среды. Изучение поведения сложно и требует тщательных наблюдений в природе, подкрепленных лабораторными экспериментами. Таким образом, поведение является эволюционно обусловленным показателем физиологического состояния животного. На основании изменений в поведенческих феноменах одного вида животных можно прогнозировать нарушения поведения и других видов. Выбор форм поведения для биотестирования определяется их чувствительностью к изменениям, происходящим в окружающей среде.
Биофизический подход.Биофизические методы контроля качества среды всегда основаны на инструментальном определении нарушений биохимических и биофизических процессов тест-организмов. Наиболее широкое распространение получили флуориметрические и люминесцентные методы измерений, обладающие высокой чувствительностью.
Измеряя интенсивность флуоресценции хлорофилла можно оценить состояние фотосинтетической активности водорослей, помещенных в среду, содержащую токсиканты.
При использовании специальных люминесцирующих культур организмов (биосенсоров) и приборов люминометров возможно проведение в течение нескольких минут исследования токсичности веществ или сред даже в полевых условиях. Свечение биосенсоров в тестируемой среде обратно пропорционально концентрации токсиканта.
Помимо сказанного, применение люминесцентных и флуориметрических методов позволяет проводить количественные измерения в режиме реального времени и автоматизировать процесс измерения. Люминесцентные и флуориметрические методы в ряде случаев дают возможность не только экспрессно тестировать качество среды, но и проводить детальный анализ состояния фитопланктонного сообщества, а также прогнозировать его развитие.
Иммунологический подход.В дополнение к генетическому подходу, характеризующему эффективность иммунной системы организма в отношении элиминации клеток с генетическими нарушениями, возможны развернутая оценка изменений иммунореактивности животного, исследование параметров иммунитета, таких как состав крови и гемолимфы, определение наличия антител в жидкостях организма, концентрации белков плазмы, перивисцеральной жидкости, оценка динамики клеточного состава.
Основная функция иммунной системы состоит в поддержании постоянства внутренней среды организма. Иммунная система – одна из самых лабильных, поэтому любые серьезные изменения в среде обитания влияют на функциональную активность иммунокомпетентных клеток:
1) фагоцитов – клеток, обеспечивающих захват и переваривание чужеродных или измененных собственных клеточных структур;
2) Т-лимфоцитов, регулирующих взаимодействие клеток внутри системы; они осуществляют распознавание и уничтожение генетически чужеродных и измененных клеток организма, дают сигнал В-лимфоцитам к синтезу антител;
3) В-лимфоцитов, продуцирующих антитела иммуноглобулиновой природы, которые нейтрализуют действие чужеродных агентов и облегчают фагоцитоз.
Иммунологический подход при оценке состояния окружающей среды заключается в изучении изменений врожденного и приобретенного иммунитета у беспозвоночных и позвоночных животных.
Параметры иммунитета животных как критерий состояния организмов, их популяций и сообществ экосистем при техногенном воздействии сравниваются с нормой (при отсутствии воздействия).
При появлении в среде чужеродных агентов у тест-организмов резко возрастает концентрация антимикробных белков (миелопероксидаза, лактоферрин, эластаза, катепсин G, лизоцим, дефенсины), катионных полипептидов, фагоцитов и гемацитов. Определение наличия специфических антител и сравнение этих параметров с нормой позволяют сделать выводы об изменении условий среды обитания или появлении заболеваний у животных.
Тестирование позволяет определять состояние живых организмов по комплексу морфологических, генетических, физиологических, биохимических, биофизических и иммунологических параметров. Используемый набор методов исследования и тестов охватывает разные стороны индивидуального развития организма, обеспечивая интегральную оценку состояния биоты и качества среды в целом.
На практике наиболее распространенными методами биотестирования являются те, в которых фиксируются, главным образом, такие интегральные параметры, как показатели выживаемости, роста, плодовитости тест-организмов.
Все рассмотренные группы методов биотестирования характеризуются своими особенностями. Это и доступность тест-объекта, которая определяется возможностью его культивирования в лабораторных условиях, поддержанием необходимых условий температуры, освещенности, сложностью состава питательных сред, чистотой воздуха и пр. Это и оперативность получения ответа. Наиболее быстрые реакции на токсическое воздействие равных концентраций удается регистрировать у простых организмов – бактерий, водорослей и инфузорий. Наступление таких реакций ограничивается минутами или несколькими часами. Сутками измеряется проявление ответных реакций более крупных объектов (у ракообразных – дафний, артемий), а так называемая хроническая токсичность оценивается в течение многих суток и даже недель. Каждый метод характеризуется и своими техническими способами реализации.
С точки зрения технического оснащения наиболее доступными оказываются методы, основанные на регистрации общебиологических характеристик: подсчете численности или прироста (гибели) популяций, который можно осуществить с использованием микроскопа или увеличительного стекла практически в любой лаборатории. Для проведения физиолого-биохимических оценок и определения соотношения, например, живых и мертвых клеток или флуоресценции тест-культур организмов необходима специальная аппаратура [4, 39].
Общим правилом для всех методов является оценка надежности тест-культур. Известно, что живые организмы по разным причинам со временем могут менять свою чувствительность, поэтому обязательной процедурой в лаборатории является контроль тест-объекта с помощью модельного токсиканта. Например, для определения пригодности культуры дафний для биотестирования проводится процедура определения диапазона реагирования тест-организмов на модельный токсикант. Методом последовательных разбавлений готовится серия растворов двухромовокислого калия K2Cr2O7 в культивационной воде с концентрациями 0,5; 0,9; 1,0; 1,5; 2,0; 2,5 мг/дм3. В приготовленные растворы помещаются дафнии. По истечении времени экспозиции проводится подсчет численности погибших рачков. Если концентрация растворов, вызвавших острую токсичность (гибель рачков более 50%), находится в диапазоне 0,9–2,0 мг/дм3, то чувствительность культуры дафний соответствует необходимым требованиям, и она может быть использована в биотестировании [43]. Аналогичным образом проводится оценка чувствительности для водорослей, инфузорий, рыб и пр. [7, 19, 26, 27].
Методы биотестирования просты, относительно недороги, пригодны для широкого применения и дают возможность оценивать качество природной среды при всем многообразии экологических изменений.
7.3. Применение биотестирования в природоохранной деятельности
Биологические методы, как правило, обладают высокой чувствительностью, улавливают более низкие концентрации веществ, чем аналитические датчики, к тому же, как уже отмечалось, по информативности для последствий вредного воздействия на окружающую природную среду превосходят физико-химические методы анализа. В связи с этим использование методов биотестирования является обязательным элементом природоохранной деятельности [4, 39].
Метод биотестирования наряду с физико-химическими методами применяется при установлении нормативных требований к качеству вод, проведении экологического контроля за соблюдением нормативов допустимых сбросов химических веществ в водные объекты, нормативов допустимых воздействий хозяйственной и иной деятельности на водные объекты, осуществлении государственного экологического мониторинга за состоянием водных объектов в районах расположения источников антропогенного воздействия, проведении оценки изменения состояния водных экосистем, биоценозов.
Исследования в области разработки и использования методов биотестирования в водоохранной практике проводились во многих научно-исследовательских и учебных институтах. В 1980 г. была признана необходимость применения биотестирования как показателя оперативной интегральной диагностики качества вод. В 1981–1986 гг. методики биотестирования были апробированы и рекомендованы для определения токсичности сточных и природных вод. По итогам апробации Всесоюзным научно-исследовательским институтом по охране вод (ВНИИВО) – головным институтом по разработке и использованию методов определения токсичности вод – в 1990 г. было подготовлено и утверждено Государственным комитетом СССР по охране природы «Методическое руководство по биотестированию воды» (РД 118-02-90). В этот документ вошли методики с использованием тест-объектов – представителей основных трофических звеньев водной экосистемы: водорослей, ракообразных и рыб.
Принятые Госкомприроды СССР в 1991 г. «Правила охраны поверхностных вод» по сути обязывали контролировать токсичность как сточных вод (при этом сточные воды не должны оказывать острого токсического воздействия на тест-объекты), так и поверхностных вод в контрольном створе, где вода не должна оказывать хронического токсического действия. Позднее для целей государственного экологического контроля Минприроды России, а затем Госкомэкологией России были подготовлены и утверждены методики для определения токсичности воды с использованием в качестве тест-объектов инфузорий и ракообразных (ПНД Ф Т* 14.1:2:3:4.2-98; ПНД Ф Т 14.1:2:3:4.3-99; ПНД Ф Т 14.1:2:3:4.4-99) и для определения токсичности вод, почв и донных отложений – методика биотестирования по ферментативной активности бактерий (ПНД Ф Т 14.1:2:3:4.1-96, 16.2:2:3:1.2-96) [27].
С тех пор количество методик выполнения измерений, внесенных в государственный реестр и рекомендованных для целей практического экологического контроля окружающей среды, увеличилось ненамного и охватывает достаточно ограниченный перечень тест-организмов (табл. 7.1).
Таблица 7.1. Методики, рекомендованные для целей практического экологического контроля окружающей среды
Шифр методики | Наименование методики | Автор методики |
1 | 2 | 3 |
ФР.1.39.2006.02506. ПНД Ф Т 14.1:2:3.13-06 (ПНД Ф Т 16.1:2.3:3.10-06) | Методика определения токсичности отходов, почв, осадков сточных, поверхностных и грунтовых вод методом биотестирования с использованием равноресничных инфузорий Paramecium caudatum Ehrenberg | ЛЭТАП, МГУ |
ФР.1.39.2006.0250 ПНД Ф Т 14.1:2.14-06 (ПНД Ф Т 16.1:3.11-06) | Методика определения токсичности высокоминерализованных поверхностных и сточных вод, почв и отходов по выживаемости солоноватоводных рачков Artemia salina L. | ЛЭТАП, лаборатория водной токсикологии, МГУ, ЭАЦ «Экотерра» |
ФР.1.39.2007.03221 | Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости цериодафний | ООО «Акварос» |
ФР. 1.39.2007.03222 | Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод, отходов по смертности и изменению плодовитости дафний | ООО «Акварос» |
ФР.1.39.2007.03223 | Методика определения токсичности вод, водных вытяжек из почв, осадков сточных вод и отходов по изменению уровня флуоресценции хлорофилла и численности клеток водорослей | ООО «Акварос» |
Окончание табл. 7.2
1 | 2 | 3 |
ФР.1.39.2007.04104. ПНД Ф Т 16.3.12-07 | Методика определения токсичности золошлаковых отходов методом биотестирования на основе выживаемости парамеций и цериодафний | ЛЭТАП, МГУ и ОАО «ВТИ» |
ПНД Ф Т 14.1:2:3:4.10-04 (ПНД Ф Т 16.1:2.3:3.7-04) | Методика определения токсичности проб поверхностных пресных, грунтовых, питьевых, сточных вод, водных вытяжек из почв, осадков сточных вод и отходов по изменению оптической плотности культуры водоросли хлорелла (Chlorella vulgaris Beijer) | Красноярский государственный университет |
ПНД Ф Т 14.1:2:4.12-06 (ПНД Ф Т 16.1:2:3:3.9-06) | Методика определения токсичности водных вытяжек из почв, осадков сточных вод и отходов, питьевой, сточной и природной воды по смертности тест-объекта Daphnia magna Straus | Красноярский государственный университет |
ПНД Ф Т 14.1:2:3:4.11-04 (ПНД Ф Т 16.1:2.3:3.8-04) | Методика определения токсичности воды и водных вытяжек из почв, осадков сточных вод и отходов по изменению интенсивности бактериальной биолюминесценции тест-системой «Эколюм» на приборе «Биотокc-10» | ООО НЦ «Экологическая перспектива» |
ПНД Ф Т 16.2:2.2-98 | Методика определения токсичности почвы и донных осадков по хемотаксической реакции инфузорий | АОЗТ «Спектр-М» |
ПНД Ф Т 14.1:2:3:4.2-98 | Методика определения токсичности воды по хематаксической реакции инфузорий | АОЗТ «Спектр-М» |
Широкий спектр тест-объектов и большой набор методик представлен в утвержденном Минприроды и Минсельхоз России в 2001 г. Временном методическом руководстве, направленном на установление нормативов допустимого содержания химических веществ, в частности нефти, в донных отложениях поверхностных водных объектов. Документ содержит набор методик по определению максимально допустимых уровней веществ, аккумулированных донными отложениями, на основе модельных экспериментальных исследований с использованием чувствительных биологических тест-объектов. И, что особенно важно, в список тест-объектов включены экологически соответствующие организмы – организмы-редуценты (бактерии), организмы-продуценты (водоросли и макрофиты), зоопланктон (инфузории и ракообразные), зообентос (моллюски и хирономиды) и рыбы (эмбрионы и взрослые особи) [7].
В последние годы Росгидрометом наработана методическая база мониторинга токсического загрязнения водных объектов с помощью биотестирования на основе принципов организации и проведения режимных наблюдений и оперативных работ в системе мониторинга поверхностных вод суши. Утвержден ряд нормативных документов, включающих методики оценки токсичности как водных вытяжек, так и неизмененных донных отложений с использованием экологически соответствующих тест-объектов [28–31].
Огромное значение методы биотестирования имеют в разработке ПДК загрязняющих веществ водных объектов рыбохозяйственного назначения. Большинство из величин ПДК для таких водных объектов установлены экспериментально с использованием «Методических рекомендаций по установлению предельно допустимых концентраций загрязняющих веществ для воды рыбохозяйственных водоемов» (М.: ВНИРО, 1986), «Методических указаний по установлению эколого-рыбохозяйственных нормативов (ПДК и ОБУВ) загрязняющих веществ для водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение» (М.: ВНИРО, 1998). В состав методов, рекомендуемых данными документами, для обоснования ПДК вошли физиологические, биофизические, морфологические и генетические методы с использованием гидробионтов различных классификационных групп: организмы-редуценты, организмы-продуценты, зоопланктон, зообентос) и рыбы [19].
Важным нормативным актом, регламентирующим обязательное применение биологических тест-систем для выявления экологической токсичности промышленных отходов, являются «Критерии отнесения опасных отходов к классу опасности для окружающей природной среды», утвержденные Приказом Министерства природных ресурсов России в 2001 г. Впервые процедура выявления класса опасности отходов для окружающей природной среды основывается не только на количественных расчетах по химическому составу содержащихся компонентов, но и на экспериментальной биологической проверке образцов [24] .
Согласно принятому документу, экспериментальный метод используется в следующих случаях:
для подтверждения отнесения отходов к пятому классу опасности, установленному расчетным методом;
при отнесении к классу опасности отходов, у которых невозможно определить их качественный и количественный состав;
при уточнении по желанию и за счет заинтересованной стороны класса опасности отходов, полученного в соответствии с расчетным методом.
Суть биотестирования отходов сводится к получению водной вытяжки из отхода в соотношении отход : вода – 1 : 10, приготовлению из полученной вытяжки серии разбавлений, в которые и помещаются тест-объекты. По величине смертности тест-объекта (при использовании водорослей возможен также и прирост их биомассы в случае перехода в вытяжку питательных веществ – биогенов, микроэлементов) определяют кратность разбавления, которая не оказывает острое токсическое воздействие на тест-объект. Класс опасности отхода оценивается в соответствии с критериями отнесения опасных отходов к классу опасности для окружающей природной среды. Градация классов опасности приведена в табл. 7.2 [24, табл. 4].
Таблица 7.2. Градация классов опасности отходов по степени воздействия водной вытяжки на тест-объекты
Класс опасности отхода | Кратность разведения водной вытяжки из опасного отхода, при которой вредное воздействие на гидробионты отсутствует |
I | > 10 000 |
II | от 10 000 до 1001 |
III | от 1000 до 101 |
IV | < 100 |
V |
При определении класса опасности отхода для ОПС с помощью метода биотестирования водной вытяжки применяется не менее двух тест-объектов из разных систематических групп (дафнии и инфузории, цериодафнии и бактерии или водоросли и т. п.). За окончательный результат принимается класс опасности, выявленный на тест-объекте, проявившем более высокую чувствительность к анализируемому отходу [24].
Перечень наиболее широко распространенных в России биотестов, применяемых в биотестировании отходов, включает методы с использованием ряда эвритопных видов: зеленых водорослей – сценедесмус (Scenedesmus quadricauda Turp. Breb.) и хлорелла (Chlorella vulgaris Beijer); ракообразных – дафний (Daphnia magna Straus) и цериодафний (Ceriodaphnia affinis Lilljeborg); простейших – инфузорий (Paramecium caudatum Erenberg) и некоторых других (см. табл. 7.1). На том основании, что наибольшую опасность для объектов окружающей среды представляет водно-миграционный путь распространения токсичных компонентов отходов, тест-организмы представляют собой виды гидробионтов. Вместе с тем совершенно очевидно, что загрязнение разных типов почв отходами сопровождается как процессами связывания токсикантов и их аккумуляцией, так и биологическим переносом и транслокацией, поэтому для анализа почвенных образцов, загрязненных отходами, целесообразно применять более широкий спектр тест-организмов, включающий почвообитающие организмы, или педобионты [39].
Среди возможностей применения методов биотестирования в природоохранной деятельности следует отметить их пригодность в мониторинге районов с интенсивным развитием промышленности и сельского хозяйства. Кроме того, биотестирование позволяет провести беглое сканирование больших пространств в целях ранней диагностики экологических нарушений. В данном случае достаточно ограничиться наиболее простыми, но эффективными методами, основанными, например, на морфологических или физиологических показателях.
Обобщить результаты, полученные методами биотестирования, допустимо по всем методам в пределах каждого подхода; по всем подходам для каждого вида или группы видов живых организмов; для экосистемы в целом, что дает надежную суммарную оценку состояния среды и исключает ошибочное заключение, вполне возможное при использовании единичных показателей в отношении отдельных видов. Итоговое заключение должно содержать характеристику качества среды в исследуемом районе (оценку степени отклонения от нормы и фонового состояния, оконтуривание зоны ощутимых последствий воздействия) и оценку благоприятности среды для человека.
Комплексная оценка качества среды обитания помимо использования разных подходов и тест-объектов биотестирования подразумевает организацию наблюдений за всеми природными средами, в первую очередь за воздушной, водной и почвенной компонентами биосферы [4].
Таким образом, можно выделить направления использования методов биотестирования:
оценка токсичности водной среды (сточные воды, природные воды – с целью выявления потенциальных источников загрязнения; питьевые воды);
контроль эффективности работы очистных сооружений сточных вод;
контроль эффективности водоподготовки питьевых вод;
экспериментальная оценка токсичности промышленных отходов с целью установления их класса опасности;
проведение экологической и санитарно-эпидемиологической экспертиз новых материалов, веществ, технологий очистки и пр.
мониторинг воды и донных отложений водных объектов;
мониторинг почв;
мониторинг атмосферного воздуха.
ГЛАВА 8. СПЕЦИФИКА И МЕХАНИЗМ
ТОКСИЧЕСКОГО ДЕЙСТВИЯ
8.1. Химический канцерогеногенез
Канцерогеном(физическим, химическим и вирусным) называют агент, способный вызывать или ускорять развитие новообразования независимо от механизма (или механизмов) его действия или от степени специфичности эффекта. Канцероген– это агент, который в силу своих физических или химических свойств может вызывать необратимое изменение или повреждение в тех частях генетического аппарата, которые осуществляют гомеостатический контроль над соматическими клетками. Канцерогенность отражает способность того или иного фактора вызывать опухоли.
Канцерогенная опасность (риск) – вероятность значительного повышения частоты возникновения опухолей у людей, подвергающихся воздействию определенных канцерогенных факторов в быту и/или на производстве, коррелирующая с индивидуальными особенностями образа жизни, эндогенными факторами (факторами организма), загрязнениями окружающей среды или профессиональными вредностями.
Классификации канцерогенов.Химические канцерогены в зависимости от их происхождения могут быть разделены на две группы: природные, то есть не связанные с деятельностью человека, и антропогенные, появление которых в окружающей среде обусловлено деятельностью человека. Однако подобная градация носит условный характер, поскольку практически все канцерогены природного происхождения могут поступать в окружающую среду и извне в результате антропогенной или техногенной деятельности (например, поверхностно-активные углеводороды).
Столь же условно разделение канцерогенов на химические, физические и биологические агенты (например, асбест или кремний может рассматриваться и как химическое соединение, и как физический агент).
Существует классификация химических канцерогенов в зависимости от характера их действия на организм:
вещества местного действия, вызывающие опухоли на месте аппликации, например бенз(а)пирен;
Дата добавления: 2016-02-13; просмотров: 2177;