ПРЕДМЕТ И МЕТОД ЭПИДЕМИОЛОГИИ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ 8 страница

Ф дезинфекция,

• предстерилизационная очистка,

• стерилизация.

Первый этап — дезинфекция медицинских инструментов — описана в предыдущем разделе. Второй этап обработки инст­рументов, подлежащих стерилизации, — предстерилизацион­ная очистка имеет целью удаление белковых, жировых, меха­нических загрязнений и остаточных количеств лекарственных препаратов. Предстерилизационную очистку осуществляют механизированным или ручным способами с использованием разрешенных моющих средств. Разъемные изделия подверга­ют предстерилизационной очистке в разобранном виде и с за­полнением каналов.

Механизированную очистку проводят в моечных машинах специального назначения: для игл, шприцев, различных инст­рументов.

Ручным способом обработку проводят в следующей после­довательности:

— промывание изделия проточной водой в течение 0,5 мин;

— замачивание при полном погружении изделия на 15 мин при 50 °С в моющем растворе 0,5 % "Биолот" или 0,5 % растворе перекиси водорода с 0,5 % одного из синтети­ческих моющих средств (CMC): "Лотос", "Лотос-авто­мат", "Астра", "Айна", "Маричка", "Прогресс";

— мойка каждого изделия в том же моющем растворе с по­мощью ватно-марлевого тампона или ерша в течение 0,5 мин;

— ополаскивание проточной, а затем дистиллированной водой;

— сушка горячим воздухом при температуре 75—87 °С в су­шильных шкафах до полного исчезновения влаги.

Известно, что перекись водорода вызывает коррозию инст­рументов из коррозионно-неустойчивых металлов, поэтому в моющий раствор целесообразно добавлять ингибитор корро­зии в концентрации 1,4 г/л.

Раствор "Биолот" для замачивания и мойки изделий при­меняют однократно, а моющий раствор перекиси водорода с CMC можно использовать в течение суток.

В настоящее время созданы средства, сочетающие дезин­фицирующие и моющие свойства и позволяющие проводить одновременно дезинфекцию и предстерилизационную очист­ку инструментов в один этап ("Лизетол АФ", "Септодор-Фор- е", "Деконекс Денталь ББ", "Дюльбак", "Гротанат"). С этой же

целью можно применять "нейтральные" анолиты, получаемые на диафрагменных электрохимических установках из раство­ров поваренной соли. Католиты, получаемые в катодных ка­мерах установок, обладают только моющими свойствами, их применяют для предстерилизационной очистки инструментов из любых материалов.

Контроль качества предстерилизационной обработки про­водят выборочно (1 % изделий каждого наименования) путем постановки проб на остаточную кровь (азопирамовой или амидопириновой) и остатки моющего средства (фенолфталеи­новой). Азопирам, кроме следов крови, выявляет наличие на изделиях остаточных количеств пероксидаз растительного происхождения, хлорамина, хлорной извести, стирального по­рошка с отбеливателем, а также ржавчины и кислот.

Контролю на наличие жира подвергают шприцы, исполь­зованные для масляных инъекций, проводят пробу с Суданом

III.

При положительной пробе на кровь, моющее средство или жир всю партию контролируемых изделий подвергают повтор­ной обработке до получения отрицательных результатов.

Стерилизацию изделий медицинского назначения осущест­вляют следующими методами:

• термическим (паровые, воздушные, гласперленовые сте­рилизаторы);

• химическим (растворы химических веществ, газовая сте­рилизация);

• радиационным (установки с радиоактивным источником излучения).

В последнее время на основе принципиально новых техно­логий созданы плазменные стерилизаторы, использующие энергию воздействия потока активированных молекул инерт­ного газа, ускоренных в электрическом поле, на поверхность стерилизуемых объектов, а также озоновые стерилизаторы.

Оптимальный метод стерилизации определяют с учетом материала, из которого состоит обрабатываемое изделие, его конструктивного исполнения, необходимости длительного со­хранения стерильности и др.

В практике работы ЛПУ наиболее широко применяют тер­мический метод стерилизации с использованием паровых и воздушных стерилизаторов.

Паровой метод стерилизации. В паровых стерилизаторах обрабатывают хирургическое белье, перевязочный материал, хирургические инструменты, детали приборов и аппаратов из коррозиестойких материалов, стекла (в том числе шприцы с пометкой 200 °С), резины (катетеры, зонды, трубки, перчат­ки), текстильных материалов.

Стерилизующим агентом является насыщенный водяной пар под избыточным давлением. Температурный режим сте­рилизации в современных паровых стерилизаторах варьирует от 126 до 141 °С, а время стерилизации соответственно от 3 до 10 мин.

Эффективность стерилизации в паровом стерилизаторе за­висит от правильного выбора упаковки, соблюдения правил загрузки и плотности загрузки для свободного прохождения пара.

Воздушный метод стерилизации. В воздушных стерилизато­рах стерилизующим агентом является сухой горячий воздух, при этом не происходит увлажнения упаковки и изделий и не наблюдается коррозия коррозионно-неустойчивых металлов, не осложняются условия сохранения стерильности. Однако по эффективности воздействия на микроорганизмы он уступает пару, и для обеспечения стерилизации требуются более высо­кие температуры. Режимы стерилизации воздушным методом в стерилизаторах нового поколения характеризуются темпера­турой от 160 до 200 °С и временем стерилизации от 30 до 120 мин.

Воздушным методом стерилизуют хирургические и гинеко­логические инструменты, детали и узлы приборов и аппара­тов, в том числе изготовленных из коррозионно-неустойчи­вых материалов, инъекционные иглы, шприцы с пометкой 200 °С и др.

Газовый метод стерилизации. Стерилизацию в газовых сте­рилизаторах осуществляют при невысоких температурах (18— 80 °С) с применением оксида этилена, смеси ОБ (смесь окси­да этилена и бромистого метила в весовом соотношении 1:2,5), а также паров раствора формалина в этиловом спирте. Изделия стерилизуют в упаковке из полиэтиленовой пленки, пергамента или бумаги оберточной марки. Газовую стерилиза­цию в качестве "холодного" метода используют для термола­бильных изделий медицинского назначения из полимерных материалов (резины, пластмассы), колющих, режущих хирур­гических инструментов, имеющих зеркальные поверхности, оптического оборудования (эндоскопы), кардиостимуляторов, предметов одноразового пользования.

Срок хранения изделий, стерилизованных газовым мето­дом в полиэтиленовой пленке, — годы, в остальных упаков­ках — 20 сут.

Метод стерилизации с помощью растворов химических средств. Для стерилизации рекомендованы растворы: анолит нейтральный, "Бианол", Тигасепт ФФ", глутаровый альдегид, ^ЛДюльбак растворимый", "Колдспор", "Лизоформин 300", 'Первомур" (4,8 %), перекись водорода (6 %), "Сайдекс"

В растворах химических веществ обрабатывают инструмен­ты из коррозиестойких материалов, изделия из стекла, пласт­масс, металла (сплавы титана), резины на основе силиконово­го каучука, в том числе эндоскопы. Лигатурный шовный ма­териал может быть стерилизован первомуром в концентрации 4,8 % в отличие от первомура для обработки рук (2,4 %).

Гласперленовые стерилизаторы используют для стерилиза­ции мелких стоматологических инструментов. В качестве сте­рилизующей среды — нагретые стеклянные шарики.

Радиационный метод стерилизации — ведущий метод про­мышленной стерилизации на предприятиях, выпускающих стерильные изделия медицинского назначения однократного применения: пластмассовые зонды, катетеры, трубки, систе­мы для взятия и переливания крови, акушерские комплекты, перевязочный материал.

Стерилизующим агентом являются ионизирующие гамма- и бета-излучения. Энергия используемых для стерилизации излучений не вызывает наведенной радиации у стерилизуемых изделий. Срок сохранения стерильности в индивидуальной упаковке из полиэтиленовой пленки исчисляется годами, но ограничивается сроком годности изделия к использованию и указывается на упаковке.

Контроль стерилизации проводят с помощью физического и химического методов.

Физический метод контроля работы стерилизаторов осуще­ствляют с помощью контрольно-измерительных приборов, фиксирующих температуру, давление и время.

Химический метод состоит в использовании химических тестов и термохимических индикаторов, которые размещают в стерилизационной камере в контрольных точках при каждой закладке инструментов и материалов как вне упаковок, так и в стерилизационные коробки (биксы) и внутри упаковок. При обнаружении неудовлетворительных результатов контроля за­грузку считают нестерильной.

Эффективность стерилизации контролируют бактериологи­ческим методом, используя биотесты стерилизации, представ­ляющие собой объекты (флаконы, фольгу и др.), обсеменен­ные тест-микроорганизмами, например спорами B.stearother- mophilus или В. Ucheniformis. На основании гибели тест-мик­роорганизмов делают заключение об эффективности про­цесса.

Контроль стерильности заключается в определении на из­делиях, подвергнутых стерилизации/ тест-микроорганизмов, способных к размножению.

Дезинфекционный режим в лечебно-профилактических учреждениях

Дезинфекционные мероприятия в ЛПУ занимают главенст­вующее место в комплексе профилактических и противоэпи­демических мероприятий и направлены на предупреждение возникновения, ограничение распространения и ликвидацию внутрибольничной инфекции (ВБИ).

Объем и вид проводимой в ЛПУ дезинфекции определяют профиль стационара, наличие больных с инфекционными за­болеваниями и показатель заболеваемости ВБИ. В стациона­рах постоянно осуществляют профилактическую, а по показа­ниям — очаговую (текущую и заключительную) дезинфекцию.

Особенностью этой работы является то, что она выполня­ется в присутствии больных и при непрерываемой деятельно­сти медицинского и обслуживающего персонала, что опреде­ляет выбор средств и методов дезинфекции. Конкретный план дезинфекционных мероприятий в ЛПУ составляют с учетом наиболее значимых в качестве факторов передачи объектов внешней среды, наиболее часто и массивно обсемененных па­тогенными и условно-патогенными микроорганизмами — возбудителями ВБИ.

Ответственность за организацию и проведение комплекса санитарно-гигиенических и противоэпидемических мероприя­тий возложена на главного врача лечебно-профилактического учреждения. Старшая медицинская сестра ответственна за обучение среднего и младшего персонала.

Значимым фактором передачи возбудителя инфекционных болезней в условиях ЛПУ являются руки медицинского пер­сонала, что обосновывает необходимость систематической их обработки. Различают гигиеническую и хирургическую обра­ботку рук медицинского персонала.

Гигиеническая обработка рук предусматривает удаление или уничтожение транзиторной (поверхностной) патогенной или условно-патогенной микрофлоры для предупреждения рас­пространения ее на окружающие объекты и пациентов. Гигие­ническую обработку обязан проводить весь персонал регуляр­но, используя один из следующих способов:

• тщательное мытье рук туалетным или хозяйственным мылом при двукратном намыливании их с последую­щим вытиранием стерильной салфеткой;

• тщательное мытье рук антисептическими мылами в те­чение 30 с с последующим смыванием пены;

• протирание рук в течение 1—2 мин тампоном, смочен­ным в одном из дезинфицирующих растворов (70 % этиловом спирте, 0,5 % хлоргексидине биглюконате в 70 % этиловом спирте);

• нанесение на поверхности ладоней 3 мл одного из кож­ных антисептических препаратов и втирание в кожу в течение 30 с ("АХД-2000-специаль", "Октенидерм", "Ок- тениман", "Сагросепт", "Спитадерм", "Велтосепт" и др.).

Способ обработки определяют выполняемая работа и воз­можность контаминации рук условно-патогенными и патоген­

ными микроорганизмами. После манипуляций, связанных с возможностью попадания на руки патогенной микрофлоры, обязательно применяют дезинфицирующие средства, включая те случаи, когда персонал работает в перчатках.

Хирургическая дезинфекция рук обязательна для персонала, участвующего в операции, и проводится после предваритель­ного мытья рук с мылом в течение 1 мин при двукратном на­мыливании. Антисептик наносят на вытертые насухо стериль­ной салфеткой руки.

Для хирургической обработки рук используют рецептуру С-4, 0,5 % хлоргексидин биглюконат в 70 % этиловом спирте, "Велтосепт", 1 % дегмицид и др.

В приемном отделении после осмотра больного дезинфи­цирующим раствором промывают клеенку, покрывающую ку­шетку. Всех больных осматривают на педикулез. В специаль­ном помещении проводят полную санитарную обработку по­ступающих больных.

В лечебных отделениях перед поступлением больного обра­батывают дезинфицирующим раствором кровать, тумбочку, подставку для подкладного судна. Постельные принадлежно­сти дезинфицируют в паровой камере или паровоздушным способом; палаты проветривают 4 раза в день. Ванну для больных и смену постельного и нательного белья назначают 1 раз в 7—10 дней.

Термометры хранят в промаркированной емкости в сухом виде. Использованные термометры погружают в 2 % раствор хлорамина на 5 мин, затем промывают проточной водой.

В процедурном кабинете стерильный стол накрывают на срок 6 ч. Во время работы корнцанги и пинцеты для стериль­ного материала хранят в дезинфицирующем растворе (1 % водный раствор хлоргексидина биглюконата, 1 % раствор хлорамина).

Инъекционное поле двукратно протирают ватными шари­ками, смоченными 70 % спиртом или другим предназначен­ным для этих целей антисептиком.

Инъекционные иглы и шприцы после использования по­мещают в емкости с дезинфицирующим раствором, промывая их перед погружением и заполняя дезинфицирующим раство­ром. Шприцы однократного применения после дезинфекции направляют на утилизацию.

Смену спецодежды проводят не реже 2 раз в неделю. Теку­щую уборку выполняют 2 раза в день влажным способом с применением дезинфицирующих средств. Для бактерицидно­го облучения помещений используют комбинированные или рециркуляционные лампы, которые включают после уборки в конце рабочего дня на 30 мин. Генеральную уборку проводят 1 раз в неделю.

В операционном блоке стерильные инструменты и материал, необходимые для операции, выкладывают на стерильный стол перед началом операции. Для шитья используют только сте­рильный ампулированный шелк, капрон или кетгут. Кожу па­циента обрабатывают кожным антисептиком, для изоляции операционного поля применяют стерильные простыни и пе­ленки. Использованные инструменты и материал собирают в специально выделенную емкость и выносят из операционной.

Текущую уборку операционного блока проводят не реже 2 раз в день с применением дезинфектантов и УФ-облучения, а генеральную уборку — 1 раз в неделю 6 % раствором переки­си водорода и 0,5 % моющим средством, затем дополняют УФ-обработкой.

В "чистых" зонах стационаров (операционных блоках, бок­сах для гематологических больных и т. д.) проводят очистку и дезинфекцию воздуха с использованием специализированных фильтров тонкой очистки воздуха (типа HEP А), установок ла­минированных потоков воздуха, рециркуляторов, принцип действия которых основан на принудительном покачивании воздуха через аппарат, в котором размещены УФ-лампы.

В палатах для больных анаэробной инфекцией устанавлива­ют потолочные и настенные бактерицидные облучатели. Па­латы обрабатывают 2 раза в день 6 % раствором перекиси во­дорода с 0,5 % моющим средством.

В профильных отделениях для больных гнойными хирургиче­скими заболеваниями в приемном отделении после осмотра больного персоналу следует обрабатывать руки 70 % этиловым спиртом или 0,5 % раствором хлоргексидина биглюконата в 70 % этиловом спирте (5—8 мл раствора наливают на ладони и втирают в течение 2 мин), перчатки сбрасывают в емкость с дезинфицирующим раствором. Персоналу выдают индивиду­альные полотенца на 1 день.

В отделении уборку проводят 2 раза в день мыльно-содо­вым раствором, палаты оборудуют бактерицидными УФ-облу- чателями закрытого типа. При перевязках больного врач и ме­дицинская сестра используют клеенчатые фартуки, которые протирают ветошью, смоченной дезинфицирующим раство­ром (1 % раствором хлорамина, 0,75 % ПВК и др.).

В инфекционном отделении выделения больного (рвотные массы, испражнения) обеззараживают сухой хлорной изве­стью, нейтральным гипохлоритом кальция, гипохлоритом кальция техническим из расчета 1:5 в течение 2 ч. После уда­ления выделений емкости обеззараживают при их полном по­гружении в дезраствор. Термометры после использования це­ликом погружают в емкость с 2 % раствором хлорамина на 5 мин, затем промывают.

На пищеблоке соблюдают требования по режиму предпри­ятий общественного питания. Персонал сдает зачет по сани­тарному минимуму. Посуду обрабатывают в моечных буфетов лечебных отделений. Для этого предназначены баки для зама­чивания и кипячения посуды, моющие и дезинфицирующие средства и маркированный уборочный инвентарь. Посуду сле­дует кипятить в течение 15 мин или в течение 30 мин замачи­вать в одном из растворов: 0,5 % хлорамин, 0,1 % сульфохлор- антин, 1 % дихлор-1, 0,05 % дезоксон-1 с последующим мыть­ем. Уборочный инвентарь маркируют и используют только по назначению.

Меры предосторожности при работе с дезинфекционными средствами и первая помощь при отравлении ими приведены в Приложении 3.

Дезинфекционные камеры

Камерный способ дезинфекции и дезинсекции применяют для обработки одежды и постельных принадлежностей боль­ных инфекционными болезнями, в том числе меховых и ко­жаных вещей, а также книг и изделий из животного сырья. Используя разные типы камер (паровые и пароформалино­вые) и варьируя условия обработки в них, можно достичь на­дежного уничтожения вегетативных и споровых форм микро­организмов и переносчиков.

Дезинфекционные камеры имеются в отделениях камерной дезинфекции районных дезинфекционных станций, в больни­цах для инфекционных больных, а также при многопрофиль­ных городских больницах и родильных домах. Камерной об­работке при заключительной дезинфекции подлежат вещи больных инфекционными болезнями (тифо-паратифозные инфекции, полиомиелит и др.), а в больницах — постельные принадлежности всех выписанных больных.

Камеры изготавливают заводским путем, на месте их встраивают в здание таким образом, чтобы две двери камеры открывались в разные изолированные помещения. Одна дверь — в загрузочную (грязную) половину, куда доставляют и где сортируют вещи, предназначенные для дезинфекции, а вторая — в разгрузочную (чистую), куда выгружают из камеры вещи по окончании дезинфекции.

Паровые камеры имеют форму цилиндра; действующим аген­том в них является пар, подаваемый под давлением сверху для вытеснения воздуха. Обработка в паровой камере проводится текучим паром при непрерывном движении его сверху вниз или паром под давлением до 0,5 рабочей атмосферы. В этом случае выходное отверстие для пара перекрыто. Режим работы камеры зависит от стойкости возбудителя и качества обрабаты­ваемых вещей. Малоценные вещи, постельные принадлежности разрешается дезинфицировать паром под давлением. Одежду обрабатывают текучим паром, так как при повышенном давле­нии пара нарушается прочность изделий (табл.4.2).

Пароформалиновые камеры имеют форму прямоугольной коробки. Действующим агентом является водяной пар и пары формалина. Водяной пар подается в камеру снизу, в результа­те образуется паровоздушная смесь, а формалин распыляется сверху. По окончании дезинфекции формалин нейтрализуют нашатырным спиртом, проветривают и подсушивают вещи. Дезинфекция пароформалиновым способом является надеж­ной и щадящей, она применяется для шерстяных, меховых, кожаных изделий, ковров, резиновой обуви и синтетических материалов (табл.4.3).

В этих камерах можно проводить и дезинсекционную обра­ботку, используя паровоздушную смесь без формалина. Хлоп­чатобумажные, шерстяные вещи и постельные принадлежно­сти обрабатывают при температуре 80—85 °С в течение 5 мин, кожаную и меховую одежду, обувь — при 57—59 °С или 49— 51 °С в течение соответственно 30 и 90 мин.

ДЕЗИНСЕКЦИЯ

Медицинская дезинсекция — составная часть энтомологии, изучает членистоногих, имеющих эпидемиологическое и са­нитарно-гигиеническое значение.

Членистоногие являются наиболее многочисленным типом беспозвоночных. Некоторые из них приносят вред сельскому и лесному хозяйствам, портят продукты, мебель, деревянные части строений; другие являются переносчиками возбудителей инфекционных болезней человека и животных.

В связи с этим выделяют дезинсекцию медицинскую, вете­ринарную, сельскохозяйственную и др.

В задачу медицинской дезинсекции входит разработка средств, методов, тактики уничтожения и регулирования чис­ленности ряда видов членистоногих.

Дезинсекция — уничтожение насекомых и клещей, являю­щихся переносчиками возбудителей инфекционных (пара­зитарных) болезней, а также других членистоногих, имею­щих санитарно-гигиеническое значение и мешающих труду и отдыху людей. Дезинсекцию разделяют на два вида: про­филактическую и очаговую.

Профилактическая дезинсекция имеет целью предупрежде­ние выплода членистоногих (прежде всего насекомых) и засе­ления ими жилых и хозяйственных построек.

Профилактические мероприятия включают формирование условий, препятствующих размножению и сохранению пере­носчиков: регулярное мытье и гигиена тела, соблюдение ги­гиенических требований к жилищу, правильное хранение пи­щевых продуктов и отходов, засетчивание окон и дверей, очи­стка территории от мусора и др.

Очаговая дезинсекция проводится в очагах трансмиссивных болезней, педикулеза, чесотки, а также в очагах кишечных инфекций при наличии мух.

Основой дезинсекционных мероприятий являются истре­бительные меры, т. е. уничтожение переносчиков на всех ста­диях их развития. С этой целью используют механические, физические, биологические и химические способы.

Механические средства — защитные сетки и костюмы, му­холовки, липкая бумага.

Физические средства — сухой горячий воздух, водяной пар, кипячение — применяют в очагах педикулеза и чесотки для обработки постельных принадлежностей, белья, одежды, обуви.

Биологический способ приобрел значение в последние годы, главным образом для уничтожения личинок комаров и мух. Для этого используют "микробиологические инсектициды", представляющие собой токсины и споры энтомопатогенных микроорганизмов (B.thuringiensis, B.sphaericus). Например, препарат "Бактокулицид" используют для обработки водоемов и подвалов. Распространенным средством для уничтожения личинок комаров в водоемах являются личинкоедовые рыбы (гамбузия, карповые, белый амур).

В качестве биологических средств применяют аналоги юве­нильных гормонов и генетические методы, которые обеспечи­вают прекращение или максимально ограничивают размноже­ние членистоногих. Химическая стерилизация приводит к частичному или полному бесплодию насекомых.

Химический способ — применение различных химических средств, называемых инсектицидами. Химические средства, используемые для уничтожения насекомых, называют инсек­тицидами, личинок — ларвицидами, клещей — акарицидами, яиц насекомых — овицидами.

По способам проникновения в организм насекомых разли­чают кишечные инсектициды, яды дыхательных путей (фуми­ганты) и контактные инсектициды (проникающие через по­кровы тела).

Кишечные инсектициды применяют для уничтожения насе­комых с грызущим или лижуще-сосущим ротовым аппаратом (тараканы, мухи, рыжие домовые муравьи и др.).

Фумиганты, как правило, газообразные вещества и легко испаряющиеся жидкости, которые быстро заполняют обраба­тываемое помещение, проникают в щели и норы грызунов. Препараты токсичны для людей, поэтому работа с ними тре­бует навыков, соблюдения мер предосторожности и создания герметичности в обрабатываемых помещениях. Газовый спо­соб дезинсекции применим на складах, железнодорожном и йодном транспорте для обработки вагонов и судов. В послед­нее время используют пиротехнические средства, содержащие инсектицид, преимущественно из группы пиретроидов (пиро­технические шашки, шнуры, таблетки).

В быту в качестве фумигантов применяют препараты, на-

Схема 4.3. ХИМИЧЕСКИЕ СРЕДСТВА ДЕЗИНСЕКЦИИ

Инеектициды

Фосфорорганические соединения

"Дихлофос"

"Метилацетофос"

"Байтекс"

—► Карбаматы "Дикрезил"

Пиретрины и пиретроиды