БИОТЕХНОЛОГИЧЕСКИЕ ПРОЦЕССЫ В ПИЩЕВОЙ ПРОМЫШЛЕННОСТИ 28 страница

7 Г-'горова

Изолированные протопласты можно культивировать. Обычно для этого используют те же среды, на которых растут изолирован­ные клетки и ткани. Сразу же после удаления ферментов у прото­пластов в культуре начинается образование клеточной стенки. Протопласт, регенерировавший стенку, ведет себя как изолиро­ванная клетка, способен делиться и формировать клон клеток. Регенерация целых растений из изолированных протопластов со­пряжена с рядом трудностей. Получить регенерацию через эмбрио­генез удалось пока только у растений моркови. Стимуляцией пос­ледовательного образования корней и побегов (органогенез) до­бились регенерации растений табака, петунии и некоторых дру­гих растений. Следует отметить, что протопласты, изолированные из генетически стабильной клеточной культуры, чаще регенери­руют растения и с большим успехом используются при исследо­ваниях генетической модификации протопластов.

6.8. ИСПОЛЬЗОВАНИЕ МЕТОДА КУЛЬТУРЫ

ИЗОЛИРОВАННЫХ КЛЕТОК И ТКАНЕЙ В СОЗДАНИИ СОВРЕМЕННЫХ ТЕХНОЛОГИЙ

Помимо фундаментальных исследований метод культуры изо­лированных тканей широко используется в сельском хозяйстве и промышленном производстве (рис. 6.5). Примером может служить массовое клональное микроразмножение плодовоовощных и де­коративных растений, а также их оздоровление от вирусных и других инфекций. С помощью культуры in vitro можно расширить возможности селекционной работы: получать клоны клеток, а за­тем и растения с запрограммированными свойствами. Благодаря способности клеток синтезировать в культуре вторичные метабо­литы возникла отрасль промышленности, осуществляющая био­логический синтез веществ, необходимых человеку.

6.8.1. Синтез вторичных метаболитов

В настоящее время известно примерно 2-104 синтезируемых ра­стениями веществ, которые используются человеком, и их коли­чество постоянно увеличивается. Растения всегда служили источ­ником пищи, эфирных масел, красителей и, конечно же, лекар­ственных соединений. Так, мак снотворный (Papaver somniferum)j является источником болеутоляющего вещества — кодеина; из на^ перстянки (Digitalis lanata) получают дигоксин, тонизирующий сер| дечную деятельность; из хинного дерева (Cinchona ledgeriana) -4 антималярийное средство «хинидин». Особое место занимают нар| котики и стимулирующие вещества. В небольших, строго контро! лируемых количествах их используют в медицине. Однако при сй|


Биотехнологическое применение

Соматические эмбриоидьГ"
Клетки
1 1 1 1г-
II
1 1 LlJi К
11
И
LU-
|| L м н II__

. фундаментальные : исследования Вегетативное : размножение ■ Оздоровление

Искусственные семена

Вторичные продукты и биотрансформация

Гибридизация: половая,

соматическая

Гаплоидизация:

андро генная,

гиногенная

Селекция, мутации,

вариации

Замена органелл

Меристемы, яйцеклетки, эмбрионы, микроспоры пыльники ===== н Каллус

Протопласты

Молекулярно- генетическая инженерия растений


 

 


Рис. 6.5. Использование культуры клеток и тканей растений в биотехно­логии (по Х.Борнман, 1991)

стематическом употреблении низких концентраций наркотиков возникают наркозависимость и стремление к увеличению упот­ребляемой дозы. Применение высоких концентраций наркотика убивает человека. Наиболее известны опиум и героин из Papaver somniferum, кокаин из Erythroxylon, никотин из различных сортов табака. Наиболее известный стимулятор — кофеин, содержащий­ся в растениях чая и кофе. Стимуляторы не токсичны в концент­рациях, рекомендуемых к применению. Однако высокие их кон­центрации негативно влияют на сердечно-сосудистую и нервную систему человека.

Большой интерес вызвало открытие пиретринов, выделенных из цветков Chrysanthemum cinerariaefolium. Эти вещества — мощ­ные инсектициды. Особая их ценность заключается в том, что пиретрины не вызывают привыкания у насекомых, а также не проявляют кумулятивного токсического эффекта.

Способность интактных растений синтезировать различные со­единения привела к предположению, что тем же свойством будут обладать клетки и ткани этих растений, выращиваемые в стериль­ных условиях. Для некоторых культур это оказалось справедливым. Но в отдельных случаях клетки либо не проявляли способности к синтезу необходимых веществ, либо синтезировали их в мини­мальных количествах. Понадобились долгие эксперименты по под­бору питательных сред, условий культивирования, исследованию новых штаммов, полученных благодаря генетической гетероген­
ности каллусных клеток или применению мутагенных фактороь чтобы добиться серьезных успехов в этой области.

В настоящее время промышленный синтез вторичных метабо литов — очень перспективное направление. Синтез вторичны: метаболитов происходит главным образом в суспензионной куль­туре клеток, в регулируемых условиях, поэтому он не зависит о~ климатических факторов, от повреждения насекомыми. Культурь выращивают на малых площадях в отличие от больших массивог плантаций с необходимыми растениями. Культуры клеток расте­ний могут синтезировать практически все классы соединений вто­ричного обмена, причем довольно часто в количествах, в нескольк< раз превышающих их синтез в целых растениях. Например, выхол аймалицина и серпентина в культуре клеток Catharanthus roseur составляет 1,3 % сухой массы, а в целом растении — 0,26 %. В культура- клеток Dioscorea dettoidea диосгенин синтезируется в количеств^ 26 мг на 1 г сухой массы, а в клубнях растений его содержание составляет 20 мг на 1 г сухой массы. Кроме того, в культурах ют- ток может начаться синтез веществ, не характерных для исходно­го растения, либо расширяется набор синтезируемых соединений В ряде случаев в клеточной культуре образуются вещества, кото­рые синтезировались интактным растением на ювенильной фаз:- развития, либо вещества, содержавшиеся в клетках филогенети­чески более ранних групп растений. Так, в культуре клеток Papave bracteatum содержится сангвирин, характерный для ювенильны:. растений, и отсутствует тебаин, синтезируемый взрослыми рас­тениями. А в культуре клеток живокости (Delphinium) синтезиру­ются Д7-стерины, присутствующие у архаичных групп растений.

Синтез вторичных соединений может коррелировать с процес­сом дифференцировки в культуре клеток. Например, в суспензион­ной культуре Papaver somniferum максимальный синтез алкалоидов начинается после того, как в ней дифференцируется достаточна большое количество специализированных клеток млечников, пред­назначенных для депонирования метаболитов. С другой стороны, культуры клеток табака и моркови синтезируют большое количе­ство никотина и антоцианина соответственно, хотя их клетки сла­бо дифференцированы. Не существует также однозначного ответа на вопрос, как связан синтез вторичных метаболитов с ростовым» процессами. У большого числа культур вторичные метаболиты син; тезируются и накапливаются в значительных количествах либо в? время экспоненциальной фазы, когда ростовые процессы особен* но активны, либо в период стационарной фазы роста культура клеток, когда прирост клеточной массы прекращается. Однако ecti культуры, например культура клеток Catharanthus roseus, у которь: синтез вторичных метаболитов сопровождает весь период роста. |

Важная особенность культивируемой популяции клеток — е стабильность в отношении синтеза и накопления продуктов вто| ричного синтеза. Так, в отделе биологии клетки и биотехнологии ИФР РАН под руководством Р. Г. Бутенко были получены разные штаммы клеток Dioscorea deltoidea, в том числе штамм-сверхпро­дуцент ИФР ДМ-0,5. Все эти штаммы сохраняли стабильность в отношении синтеза фуростаноловых гликозидов около 26 лет. Интересная особенность большинства клеток в культуре состоит в том, что обычно эти клетки не транспортируют синтезируемые метаболиты в питательную среду или другие клетки, хотя некото­рые культуры составляют исключение, в частности культура кле­ток мака, которые депонируют алкалоиды в млечники. Синтез вто­ричных метаболитов в культивируемых клетках связан с внутри­клеточными органеллами, в основном с пластидами и эндоплаз- матическим ретикулумом. В клетках, не способных к транспорту метаболитов, продукты вторичного синтеза обычно накапливают­ся в вакуолях и свободном пространстве (СП) клеток (табл. 6.3).

На синтез вторичных метаболитов влияет целый ряд факторов. Прежде всего выход продукта зависит от генотипа растения-до- нора. Показано, что культуры клеток, полученных от высокопро­дуктивных растений, продуцировали большее число метаболитов. Другой важный фактор — состав питательной среды и концентра­ция ее компонентов, которые должны обеспечивать, с одной сто­роны, увеличение количества клеток-продуцентов, с другой —

Таблица 6.3 Внутриклеточная локализация синтеза и накопления вторичных метаболитов (по Р.Г.Бутенко, 1999)
Внутриклеточные метаболиты Синтез Накопление
Алкалоиды Пластиды, цитоплазма Вакуоль, хлоропласты, СП
Терпеноиды Монотерпены Тритерпены Лейкопласты Хлоропласты, лейкопласты СП Вакуоль, СП, цитоплазма
Фенолы Флавоноиды Танины Кумарины Оксикорич- ные кислоты Хлоропласты Вакуоль, пластиды Вакуоль, хлоропласты, ЭПР ЭПР, хлоропласты, митохондрии Вакуоль, хлоропласты, СП Вакуоль, СП, ЭПР Вакуоль Вакуоль, СП, хлороплас­ты
Цианогенные гликозиды ЭПР Вакуоль
Глюкозинолаты ЭПР Вакуоль
Бетаины Предположительно цито­плазма Вакуоль

усиливать сам процесс синтеза. На рост, т.е. на увеличение био­массы, существенно влияет природа и количество углеводов, со­единений азота и фосфора, на синтез метаболитов — природа и концентрация фитогормонов. Так, при замене одного ауксина на другой, например нафтилуксусной кислоты на 2,4-D, трехкратно увеличился синтез антрахинона суспензионной культурой Morinda citrifolia.

Очень большое влияние на рост суспензионной среды оказы­вает ее непрерывное перемешивание, которое обеспечивает хоро­шую аэрацию и предотвращает осаждение клеток. В лабораторных условиях перемешивание достигается благодаря использованию качалок или роллерных установок. При промышленном выращи­вании суспензионных культур применяют специальные системы, в которых идут увеличение биомассы и синтез вторичных соеди­нений, — биореакторы. Эти системы обладают важными преиму­ществами: возможностью управлять процессом культивирования на основе показаний датчиков; кроме того, большой объем куль­тивируемого материала позволяет забирать значительные пробы, при этом стрессовые реакции у культуры клеток не возникают. В зависимости от способа перемешивания культуральной жидкости биореакторы делят на две группы.

Первая группа включает биореакторы, в которых суспензион­ная культура перемешивается только за счет подачи воздуха; во второй группе биореакторов культура перемешивается механичес­ким способом (рис. 6.6).

Выращивание культур растительных клеток в биореакторах про­водят в двух режимах. Первый режим — периодическое культивиро-

Воздух Воздух Воздух Воздух 1 2 3 4 \ } Рис. 6.6. Схема работы основных типов биореакторов: f

 

1 — биореактор с механическим перемешивающим устройством; 2 — барботаж-1 ный биореактор; 3 — аэролифтный биореактор; 4 — биореактор с вынесенной

циркуляционной петлей \

182 j вание — заключается в том, что по окончании процесса откачи­вают и используют всю суспензию клеток. При втором режиме — проточное культивирование — в биореактор постоянно добавля­ют свежую питательную среду и одновременно отбирают тот же объём либо суспензии (открытое проточное культивирование), либо одной отработанной питательной среды, оставляя клетки в реакторе (закрытое проточное культивирование).

Существуют две разновидности открытого культивирования. Первая — турбидостат — подразумевает измерение и автомати­ческое поддержание концентрации клеточной биомассы в реак­торе на одном уровне путем изменения скорости протока. Вторая разновидность — хемостат — заключается в подаче в биореактор с постоянной скоростью питательного раствора при одновремен­ном откачивании с той же скоростью клеточной суспензии.

Существует еще одна современная технология получения вто­ричных метаболитов с помощью иммобилизованных клеток куль­туры, т. е. помещение их в определенный носитель или адсорбция в нем. Носитель с клетками помещают в питательную среду. Клет­ки остаются живыми. Они прекращают рост, но продолжают син­тез метаболитов, выделяя их в среду.

Довольно часто синтез вторичных метаболитов в суспензион­ной культуре останавливается на промежуточных этапах, не дохо­дя до необходимого продукта. Получение продукта возможно бла­годаря процессу биотрансформации. Сущность его состоит в из­менении промежуточных метаболитов с помощью культур других растений или клеток бактерий. Биотрансформация очень эффек­тивна в бактериальных клетках, поэтому растительные клетки используют, когда процесс не осуществляется в клетках микро­организмов. Вводимые в эти культуры вещества могут подвергать­ся гидроксилированию, эпоксидированию, глюкозилированию, этерификации, а также присоединяться к аминокислотам. Напри­мер, культура клеток женьшеня корневого происхождения спо­собна трансформировать (гликозилировать) фенольные соедине­ния — продукты деятельности суспензионной культуры клеток корня Panax ginseng. Культуры клеток лебеды и картофеля могут биотрансформировать индолил-3-уксусную кислоту в индолил-3- ацетил-Ь-аспарагиновую кислоту (Н. И. Рекославская и др., 1991).

Еще один пример — биотрансформация карденолидов, гликози- ды которых используют в медицине для лечения болезней сердца. Растения наперстянки (Digitalis lanata) в большом количестве синте­зируют дигитоксин вместо необходимого дигоксина. Для соответ­ствующей биотрансформации с успехом используют недифферен­цированную суспензионную культуру наперстянки. Иммобилизо­ванные клетки этой культуры способны долгое время с постоян­ной скоростью трансформировать р-метилдигитоксин в р-метил- дигоксин (А. В.Альферманн и др., 1987).

Таким образом, использование суспензионных культур для син­теза вторичных метаболитов в промышленных масштабах имеет большие перспективы, и не только с точки зрения экономичес­кой выгоды получения более дешевой продукции в запланиро­ванных количествах. Важно, что использование культуры клеток спасет от уничтожения тысячи дикорастущих растений, ставших уже редкими, которые синтезируют необходимые человеку веще­ства. Увеличение выхода продукта может быть достигнуто благода­ря дальнейшей исследовательской работе по селекции специали­зированных популяций клеток и оптимизации условий культиви­рования. Большой интерес представляет также дальнейшее разви­тие методов биотрансформации метаболитов и иммобилизации культивируемых клеток.

6.8.2. Биотехнологии в сельском хозяйстве

Ускорение и облегчение селекционного процесса, а также со­здание растений с новыми качествами — это направления, кото­рые достаточно успешно развиваются с помощью технологий кле­точной инженерии, культуры клеток и тканей.

Две группы методов, благодаря которым развиваются данные направления, представлены в табл. 6.4.

Некоторые из указанных технологий стали традиционными, другие находятся на начальных этапах разработки. Наконец, есть такие методы, которые явно вышли из ранга вспомогательных, ускоряющих селекцию технологий. К ним можно отнести крио- сохранение генофонда — технологию, в настоящий момент при­обретшую экологическую направленность; или клональное мик­роразмножение растений, тесно связанное с проблемой их оздо­ровления от вирусных и других инфекций. Поэтому обзор этих технологий вынесен за рамки данного раздела.

Технологии, облегчающие селекционный процесс. Одна из наи­более важных технологий этой группы — оплодотворение in vitro, помогающее предотвратить прогамную несовместимость, которая может быть вызвана следующими причинами:

1) генетически детерминированное (определенное) несоответ­ствие секрета рыльца материнского растения и пыльцы отцов­ского, которое тормозит рост пыльцевых трубок на рыльце пес­тика;

2) несоответствие длины столбика пестика и пыльцевой труб­ки, в результате чего пыльцевая трубка не достигает семяпочки (гетеростилия):

3) тканевая несовместимость партнеров, приводящая к оста­новке роста пыльцевой трубки в любой момент ее прорастания от рыльца пестика до микропиле семяпочки (гаметофитный тип не­совместимости).


Клеточные технологии в селекции растений (по Р. Г. Бутенко, 1999)
Облегчение и ускорение селекционного процесса Создание генетического разнообразия и скрининга генотипов с важными признаками
Оплодотворение in vitro Использование сомаклональных вариаций и получение индуциро­ванных мутантов на клеточном уровне
Культура незрелых гибридных се­мяпочек и зародышей (эмбрио- культура) Клеточная селекция
Регенерация растений из тканей летальных гибридов Гибридизация соматических кле­ток
Экспериментальная гаплоидия Перенос чужеродных цитоплазма- тических генов
Клональное микроразмножение новых сортов, гибридов, линий (включая создание искусственных семян) Перенос чужеродной генетичес­кой информации различного про­исхождения
Криосохранение генофонда Адресный перенос ядерных генов

 

Преодоление прогамной несовместимости возможно благода­ря выращиванию в стерильных условиях изолированной завязи с нанесенной на нее пыльцой или изолированных кусочков пла­центы с семяпочками, рядом с которыми или непосредственно на ткани которых культивируется пыльца.

Значительным препятствием для селекции служит также пост- гамная несовместимость, вызванная разновременным развитием зародыша и эндосперма при отдаленной гибридизации. В резуль­тате образуются невсхожие щуплые семена. Получить растение из таких семян можно только при использовании метода эмбриокуль- туры, т.е. выращивания изолированного зародыша на искусствен­ной питательной среде in vitro. Метод эмбриокультуры широко применяют при межвидовой гибридизации овощных растений, для микроразмножения ценных гибридов, для клеточной селекции.

Большое значение имеет создание гаплоидов, позволяющее ус­корить процесс селекции в 2 — 3 раза. Использование гаплоидных клеток и гаплоидных растений способствует обнаружению эксп­рессии введенного в клетку генома, редких рекомбинаций, ре­цессивных мутаций, которые в диплоидных растениях, как пра­вило, маскируются доминантными генами. Из гаплоидных клеток можно выделить протопласты; сливаясь, они образуют гибрид­ные клетки и растения с диплоидным числом хромосом. Обраба­тывая гаплоидные клетки колхицином, можно добиться удвоения числа хромосом и получить диплоидные гомозиготные растения. Все это значительно облегчает выявление и стабилизацию необ­ходимых признаков. Кроме селекции гаплоиды применяются так­же в генно-инженерных исследованиях. Впервые возможность по­лучения спонтанных гаплоидов при аномальном развитии пыль­ников, пыльцы и других объектов была показана в 1964 г. С. Гуха и С. Магешвари. В настоящее время в культуре гаплоидные растения получают из изолированных пыльников (андрогенез), изолиро­ванных семяпочек (гиногенез); из гибридного зародыша, у которого в результате несовместимости потеряны отцовские хромосомы (партеногенез). Новые сорта ячменя — Исток и Одесский-15 — были выведены благодаря комбинации партеногенетического метода с культурой изолированных зародышей за 4 года вместо 10—12 лет, необходимых для обычной селекции.

Создание генетического разнообразия исходных форм растений и скрининга генотипов. Сомаклональная изменчивость — прекрас­ный источник генетического разнообразия (сомаклональных ва­риаций), которое может быть реализовано в создании генетичес­ки измененных растений-регенерантов с новыми свойствами (со- маклональные варианты, или сомаклоны). Помимо повышения ге­нетического разнообразия, использование сомаклональных ва­риантов в 2 раза может ускорить процесс выведения нового сор­та даже для размножаемых семенами растений. Первые сомакло- нальные варианты табака были получены в Институте физиоло­гии растений им. К.А.Тимирязева (Н.А.Загорина, З.П.Шамина, 1970).

Сомаклональные вариации нельзя рассматривать как случай­ные спонтанно возникающие мутации. Генетические изменения, характерные для сомаклональных вариаций, сложны и носят ком­плексный характер. Частота таких генетических изменений на три порядка превышает частоту спонтанных мутаций. Кроме того, сома­клональные варианты отличаются от исходного растения не толь­ко качественными моногенными признаками, но и количествен­ными — полигенными (интенсивность роста, продуктивность, устойчивость к неблагоприятным факторам внешней среды).

Отмечены случаи появления сомаклональных вариантов, сочетающих признаки, которые невозможно или трудно соеди­нить в одном генотипе традиционным селекционным путем. Так, Л.А.Кучеренко (1986) выделила из сомаклональных вариантов, возникших в каллусной культуре риса, растения, сочетавшие ско­роспелость и длиннозерность. На их основе за короткий срок был. создан новый сорт риса.

По-разному сказываются на генетических изменениях и, следо­вательно, на появлении сомаклональных вариаций различные типы морфогенеза. Экспериментально установлено, что при соматичес­ком эмбриогенезе цикл «клетка — растение» совершается значи­тельно быстрее, чем при органогенезе. Поэтому степень различия между полученным и исходным родительским генотипом в случае органогенеза может быть значительно выше, чем при эмбриоге­незе.

Источником генетического разнообразия растительного мате­риала могут быть не только сомаклональные вариации, но и му­тагенез, в несколько раз повышающий образование стабильно устойчивых по искомым признакам клонов клеток.

После получения различных сомаклональных вариаций от ис­ходного растения наступает следующий этап — отбор необходи­мых сочетаний признаков. Данный вопрос решается с помощью клеточной селекции, которую проводят практически на любом объекте, введенном в культуру in vitro. Однако удобнее использо­вать суспензионную культуру или изолированные протопласты. Преимущество этих объектов состоит в быстром росте культуры и равномерном действии селективного фактора на все клетки. Для отбора сомаклональных вариаций соответствующие селективные факторы (соли в высоких концентрациях, гербициды и др.) до­бавляют в питательную среду для выращивания культуры клеток либо растущие культуры помещают в селективные условия (низ­кая или высокая температура, освещенность и т.д.). Существует несколько методов клеточной селекции:

1. Прямая (позитивная) селекция, при которой выживает только заданный тип мутантных клеток.

2. Непрямая (негативная) селекция, которая ведет к гибели деля­щихся клеток дикого типа и выживанию метаболически неактив­ных клеток. Этот прием требует дополнительной идентификации мутационных изменений у выживших клеток.

3. Тотальная селекция, при которой индивидуально тестируют­ся все клеточные клоны.

4. Визуальная селекция и неселективный отбор, когда необхо­димая вариантная линия выбирается среди прочих визуально или с помощью биохимических методов.


Для отбора клеток, устойчивых к неблагоприятным или стрес­совым факторам, наиболее часто применяют прямую селекцию. После выбора нужной популяции необходимо проверить стабиль­ность устойчивости к неблагоприятному фактору. Это длительный процесс, включающий многочисленные циклы выращивания и пересадки клеток на среды, содержащие селективный фактор или без него. Из стабильных клонов необходимо попытаться регенери­ровать растения. Получение растений-регенерантов, а также гиб­ридологический анализ подтверждают генетическую природу при-
заряд, который вызывает их взаимное отталкивание. Для слияния это отталкивание необходимо преодолеть специальными приема­ми, способствующими снятию или перераспределению поверх­ностного заряда мембран. Впервые искусственное слияние прото­пластов с помощью индуктора слияния (фьюзогена) было осу­ществлено в 1970 г. Коккингом и его сотрудниками. В настоящее время в качестве эффективных фьюзогенов используют полиэти- ленгликоль (ПЭГ) и растворы с рН 9—11 и высокой концентра­цией ионов кальция. Согласно одной из гипотез, объясняющих сли­яние протопластов при использовании ПЭГ, высокая концентра­ция этого вещества (20—30 %) способствует поглощению всей сво­бодной воды между протопластами, вызывая их слипание в резуль­тате дегидратации. Кроме того, поглощение свободной воды инду­цирует образование пор в мембране, через которые перетекает внут­риклеточное содержимое. Если повреждения мембран обратимы, слипшиеся протопласты регенерируют клеточную стенку (рис. 6.7).


Рис. 6.7. Схема слияния протопластов под действием полиэтиленгликоля (по X. Борнман, 1991): 1 — изолированные протопласты; 2— слипание протопластов в результате дегидра­тации; 3 — образование пор в мембране протопласта; 4 — перетекание через поры внутриклеточного материала; 5 — гибридный протопласт

Кроме того, существует физический фактор — импульсы элек­трического тока, который также заставляет протопласты сливать­ся. Обработка электрическими импульсами, как и обработка ПЭГ, приводит к обратимому повреждению мембран. Применение пе­ременного тока вызывает диэлектрофорез, и протопласты, нахо­дящиеся между электродами, выстраиваются в ряд, примыкая друг к другу своими полярными поверхностями. Импульс постоянного
тока приводит к образованию пор, через которые происходит сли­яние (рис. 6.8).

При соматической гибридизации развиваются клетки двух ти­пов: гибриды и цибриды. При образовании гибридов объединяет­ся ядерный геном обеих клеток. Цибридная клетка содержит ци­топлазму обоих партнеров, а ядро — одного. Такой результат дос­тигается при деградации одного из ядер после слияния или в том случае, если один из протопластов был лишен ядра.

Первый неполовой гибрид высших растений был получен в 1972 г. при слиянии изолированных протопластов двух видов таба­ка: Nicotiana glauca и Nicotiana langsdorfti. В настоящее время полу­чено много межвидовых, межсемейственных и межтрибных гиб­ридов, значительную часть которых нельзя считать нормальными растениями, а некоторые гибриды (гибрид арабидопсиса и тур­непса) представляют собой растения-монстры. Возникающие ано­малии — результат хромосомной несбалансированности. Описаны случаи возникновения гибридов между протопластами эритроци­тов крысы и дрожжевых клеток, моркови и человека и др. Любые исследования, любые манипуляции в области создания новых ге­нотипов должны быть тщательно и всесторонне продуманы, а ученые должны помнить об ответственности и научной этике. Профессор Колумбийского университета Э. Чаргафф предупреж­дал о том, что «в тысяче опытов, вероятно, ничего не случится,

Рис. 6.8. Схема слипания протопластов под действием электрического поля (по Х.Борнман, 1991): / — изолированные протопласты; 2 — слипание протопластов полярными по­верхностями; 3 — образование пор в мембранах под действием сильного импуль­са постоянного тока; 4 —смешивание цитоплазмы; 5 — образование цибридных (гибридных) протопластов

 

hq затем в одном каком-то случае произойдет нечто очень непри­ятное». Он был «убежден, что именно попытка преобразовать или перехитрить природу почти привела к ее гибели».

Введение в протопласты макромолекул, клеточных органелл и бактериальных клеток. Чужеродный генетический материал мож­но переносить в клетку не только при соматической гибридиза­ции, но и при непосредственном введении ДНК или органелл, содержащих ДНК, в изолированные протопласты. Работы в этом направлении начаты не так давно, но уже получены интересные результаты. Так, поглощение экзогенных макромолекул ДНК по­казано у протопластов петунии, сои, моркови. Проведена транс­плантация органелл (ядер, митохондрий, хлоропластов) в про­топласты растений. Наибольшую важность представляют опыты по трансплантации хлоропластов одних растений в клетки других. П.Карлсон провел опыты по введению хлоропластов нормально­го зеленого растения Nicotiana suaveolens в протопласты пестроли­стного мутанта N. tabacum. В результате культивирования прото­пластов были получены зеленые каллусы, из которых регенери­ровали растение, оказавшееся пестролистным. Для того чтобы понять, содержит растение-регенерант элементы геномов двух видов Табаков или только одного, проанализировали белковую фракцию I, в которую входит ключевой фермент цикла Кальви­на — рибулозодифосфаткарбоксилаза (РДФ-карбоксилаза). Этот фермент состоит из двух больших субъединиц и двух малых. Боль­шие субъединицы кодируются геномом хлоропластов, малые — ядерными генами. Анализ состава белковой фракции I растения- регенеранта показал присутствие полипептидов, характерных и для пластид N. tabacum, и для пластид N. suaveolens. Перспектив­ность работ по трансплантации хлоропластов заключается в том, что введение высокоэффективных хлоропластов может способство­вать активации фотосинтеза и повышению продуктивности дру­гих растений.








Дата добавления: 2016-02-09; просмотров: 1097;


Поиск по сайту:

При помощи поиска вы сможете найти нужную вам информацию.

Поделитесь с друзьями:

Если вам перенёс пользу информационный материал, или помог в учебе – поделитесь этим сайтом с друзьями и знакомыми.
helpiks.org - Хелпикс.Орг - 2014-2024 год. Материал сайта представляется для ознакомительного и учебного использования. | Поддержка
Генерация страницы за: 0.02 сек.