Диагностика раневой инфекции

Все УПМ могут вести к развитию раневой инфекции, особенно на фоне иммунокомп-ромиссного организма. В настоящее время ведущая роль в этиологии раневой инфекции принадлежит стафилококкам, энтеробактери-ям и неферментирующим грамотрицательным палочкам (псевдомонады и др.), увеличивает­ся значение неспорообразующих анаэробных бактерий, грибов.

Раневое отделяемое берут стерильными ватными тампонами из глубины раны до об­работки ее антисептическими растворами. Тампоны срочно направляют в бактериоло­гическую лабораторию. При наличии в ране дренажа отделяемое берут стерильным шпри­цем, из которого оно переносится с соблюде­нием правил асептики в стерильную пробир­ку или анаэробный транспортный флакон. Удаляемые при обработке раны кусочки тка­ней отправляют в лабораторию в стерильных чашках Петри.

Посев раневого отделяемого с тампона про­изводят на питательные среды в следующем порядке: кровяной агар; сахарный бульон; среда для анаэробов.

Жидкие пробы засевают на плотную среду петлей. Предпочтительнее производить посев по 0,1 мл раз­веденной до 10"' и неразведенной пробы, растирая ма­териал по поверхности питательной среды шпателем. В жидкие питательные среды посев производят пасте­ровской пипеткой. При посеве на анаэробы пипетку с исследуемым материалом опускают на дно пробирки, не допуская попадания пузырьков воздуха в среду.

Кусочки тканей режут стерильными ножницами, взвешивают в стерильной чашке Петри и измельчают в стерильной ступке с бульоном из расчета 1 мл бу­льона на 1 г ткани. Затем готовят десятикратные раз­ведения взвеси до 10³. По 0,1 мл каждого разведения засевают на кровяной агар.

Подсчет КОЕ/г ткани производят с учетом числа выросших колоний и сделанных разведений.

Посевы инкубируют аэробно и анаэробно при температуре 37 "С и ежедневно просмат­ривают. При появлении роста на плотной сре­де изучают культуральные свойства. Делается количественная оценка роста. В случае выяв­ления колоний различного вида подсчиты­вают число колоний каждого вида. При этом выявляют ведущий вид в ассоциации. По 2—3 колонии каждого типа отсевают на соответс­твующие питательные среды для дальнейшей идентификации.

При проявлении роста в жидких питатель­ных средах готовят мазки для окраски по Граму; с сахарного бульона производят высев на кровяной агар, среду Эндо, молочно-со-левой агар. Отрицательный результат иссле­дования выдают через 7 суток при отсутствии роста на всех питательных средах.

Для приготовления мазков отделяемого ран используют тампоны, которыми забирают и переносят материал на стекло. Мазки окраши­вают по Граму. При микроскопии мазков от­мечают морфологию и количество микробов. Выделяемые при это особенности могут вне­сти коррекцию в ход исследования — исполь­зование дополнительных питательных сред.

Экссудат берут, соблюдая правила асептики, пунк­цией полостей и отсасывают содержимое с помощью шприца. Из шприца материал переносят у пламени газовой горелки в стерильный анаэробный транспор­тный флакон и отправляют в лабораторию.

В лаборатории прозрачную жидкость центрифуги­руют 15—20 мин при 3000 об/мин и осадок использу­ют для посева и приготовления мазков. При гнойном характере экссудата готовят тонкие мазки для мик­роскопии без предварительного центрифугирования. Посев проб производят на кровяной агар, сахарный бульон, среду для анаэробов. Кроме того, использу­ют специальные питательные среды в зависимости от особенностей источника выпота. Плевральный выпот чаще всего наблюдается у больных с тубер­кулезом легких, поэтому после центрифугирования

осадок дополнительно засевают на среды для куль­тивирования туберкулезной палочки или заражают патологическим материалом морскую свинку. При эмпиемах частым возбудителем может быть пнев­мококк, стрептококк группы А, стафилококк, ана­эробы, а следовательно, необходимо сделать посев на соответствующие элективные питательные среды. При исследовании синовиальной жидкости следует использовать питательные среды для выделения го­нококков.

Интерпретация полученных данных обыч­но не представляет трудности, так как при ус­ловии соблюдения правил асептики во время взятия материала из закрытых полостей и из глубины гнойных ран выделенные микро­бы являются возбудителями данного гнойно-воспалительного процесса.

При выделении ассоциаций микробов из раневого отделяемого ведущее значение в течении раневого процесса следует отдавать видам, количественно преобладающим в дан­ном микробиоценозе. Уровень обсеменен-ности тканей в ране, равный 10⁵ КОЕ/г, явля­ется критическим. Превышение этого уровня указывает на большую вероятность развития гнойной инфекции и возможность генерали­зации процесса. При обсмененности менее 10⁵ КОЕ/г ткани раны заживают без явлений нагноения.