Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА 1 страница


 


1. Кровоток в капиллярах хориоидеи один из
самых интенсивных — 800—1200/100 гр/мин.

2. К хориоидее направляется 85% всего
объема крови, направленного к глазному ябло­
ку (к сетчатке только 4%).

3. Кровь в посткапиллярных кровеносных
сосудах хориоидеи столь же богата кислоро­
дом, как и артериальная кровь [117, 293, 828].

4. Кровообращение в сосудах хориоидеи не
ауторегулируется, поскольку насыщение кро­
ви углекислым газом минимальное [114, 117,
1196].

5. Максимальная стимуляция симпатичес­
кой нервной системы приводит к уменьшению
объема кровообращения только на 60% [114,
117, 1196]; стенка капиллярных сосудов не гер­
метична и проницаема для различных веществ,
включая белки.

Таким образом, имеющиеся анатомические и физиологические сведения не позволяли иссле­дователям объяснить механизмы развития ише­мии хориоидеи. Тем не менее, участки ишемии, а также инфаркта хориоидеи, не столь уж и редкое явление [77, 333, 515].

Были проведены многочисленные экспери­ментальные исследования, сводившиеся к вве­дению в кровяное русло микрочастиц шаровид­ной формы [80, 210, 464, 893, 1198, 1199] или флюоресцеина [77, 257, 460, 515, 1108]. Но и при этом, объяснения этому явлению найдено не было. Лишь использование флюоресцеина позволило наблюдать наполнение участков хо-риокапиллярных сосудов флюоросцеином в ви­де секторов. Последовательность и площадь наполнения сосудов кровью четко соответст­вовала строению «хориокапиллярной дольки». Долька начинала наполняться кровью с цент­ральных участков и лишь спустя несколько се­кунд кровь поступала к периферии. Поскольку строение «дольки» в различных участках уве-ального тракта различно (см. выше), различна и скорость кровенаполнения хориоидеи в раз­личных участках.

Количественные и качественные характерис­тики кровообращения в «дольках» зависят от многих причин и, в первую очередь, от внутри­глазного давления [257]. Установлено также, что венозная кровь отводится от каждой «доль­ки» в отдельности. При этом кровь соседних «долек» не смешивается. По всей видимости, такая система кровообращения предопределя­ет существование наиболее быстрого и корот­кого пути оттока венозной крови из хориоидеи. С другой стороны, возникает вероятность в определенных условиях возникновения ишемии хориоидеи на границе «долек». Наиболее часто ишемия наступает при окклюзии коротких зад­них ресничных артерий, а также сосудов глаз­ницы [460, 470].

Развитие ишемии хориоидеи неблагоприятно влияет на строение и функции сетчатой оболоч­ки. Исчезают фоторецепторы наружного ядер-


ного слоя, наступает миграция клеток пигмент­ного эпителия в сетчатку.

Таким образом, на основании приведенных данных видна несостоятельность концепции о невозможности развития ишемии хориоидеи из-за большого количества анастомозов между сосудами.

Возрастные изменения сосудистой оболоч­ки.В сосудистой оболочке глаза с возрастом уменьшается количество эластической ткани [1049], а также уменьшается толщина и самой сосудистой оболочки [868]. Вокруг крупных со­судов формируется широкая прослойка волок­нистой ткани. При этом сосуды хориоидеи на­чинают напоминать сосуды радужки. В допол­нение к описанному склерозу сосудистой стенки изменяется также число и калибр сосу­дов. Приведенные структурные изменения со­провождаются уменьшением скорости наполне­ния хориокапиллярного слоя, что показано при помощи флюоресцентной ангиографии. Появля­ются пятна гипофлюоресценции, хотя общая интенсивность свечения сохраняется независи­мо от возраста [525].

Регенерация увеального тракта.После по­вреждения любого участка увеального тракта наступает лишь заместительная регенерация. В эту область первоначально мигрируют клетки соединительной ткани (фибробласты), которые синтезируют межклеточное вещество и колла­ген, выполняющие дефект. Затем наступает организация волокнистой ткани с образованием соединительнотканного рубца. Рубец, как пра­вило, довольно интенсивно пигментирован, по­скольку в нем скапливаются зерна меланина, высвободившиеся из поврежденных стромаль-ных меланоцитов. Существуют определенные различия в скорости заместительной регенера­ции радужной оболочки. Это связано с тем, что после ее повреждения (радиальные разрывы) края раны расходятся. В таких случаях рубце­вания вообще не происходит.

Литература

1. Абрамов В. Г. Болезнь трансплантата рого­
вицы.— Ярославль: Верх.-Волж. кн. изд-во, 1972.
215с.

2. Абрамов В. Г. К вопросу об иннервации рогови­
цы // Офтальмол. журн.— 1959. — №6. — С. 358—
362.

3. Артемов А. В. Изменение дренажной зоны гла­
за и сосудов, осуществляющих ее трофику в возраст­
ном аспекте // Офтальмол. журн. — 1980. — № 7.—
С. 401—405.

4. Артемов А. В. Сравнительная характеристика
состояния тканей дренажной зоны глаза, сосудов ра­
дужки и цилиарного тела у больных системными сосу­
дистыми заболеваниями и простой глаукомой // Тез.
докл. Междунар. конф. офтальмологов городов-побра­
тимов Одессы. — Одесса, 1981, —С. 181-182.

5. Артемов А. В. Состояние дренажной зоны и со­
судов переднего отдела глаза у больных атероскле­
розом, гипертонической болезнью, сахарным диабетом


Литература



 


и открытоугольной глаукомой: Автореф. дис. ... канд. мед. наук. — Одесса, 1982.— 20 с.

6. Беляев В. С. Склеропластика в лечении прогрес­
сирующей миопии. — М.: Изд-во Ин-та дружбы наро­
дов, 1977.— 229 с.

7. Боговягин В. Л., Франк Г. М. Субмикроскопичес­
кая организация и функциональные особенности мюл-
леровских клеток сетчатки // Биофизика,— 1962.—
Т. 7. — № 1 — С. 42—50.

8. Вызов А. Л. Потенциалы в глиальных клетках
сетчатки // В кн.: Функции нейроглии.—Тбилиси:
Мецниереба, 1979. — С. 49—59.

9. Вит Ь. В., Дмитриев С. К- Гемофтальмический
барьер при травме глаза // Офтальм. журн. — 1997. —
№ 2.— С. 143.

10. Bum В. В., Мальцев Э.В. Особенности репара­
ции повреждений эпителия роговицы и хрусталика у
животных, подвергшихся хроническому воздействию
малых доз ионизирующей радиации и интенсивному
световому облучению // Офтальм. журн. — 1998. —
№1. —С. 69—73.

М.Вит В. В., Мальцев Э. В., Павлюченко К-П. Влияние повышенной инсоляции и малых доз ионизи­рующей радиации на регенерацию эпителия хрустали­ка // Офтальм. журн. — 1997. — № 5. — С. 445—448.

12. Вит В. В., Юмашева А. А., Бабанина Ю. Д.
Послеоперационные осложнения циркляжа различ­
ными материалами по данным экспериментальных
исследований // Офтальм. журн. — 1979. — № 4. —
С. 244—247.

13. Войно-Ясенецкий В. В., Думброва Н. Е. Ультра­
структура многослойной волокнистой ткани, образую­
щейся за десцеметовой оболочкой после ожога рого­
вицы серной кислотой // Офтальм. журн.— 1971.—
№8.— С. 599—603.

14. Войно-Ясенецкий В. В. О природе и регенера-
ционных свойствах клеток стромы и эндотелия рого­
вицы // В кн.: Материалы 3-й конференции по вопро­
сам регенерации и клеточного размножения, 1962. —
С. 28-30.

15. Войно-Ясенецкий В. В. Патологический рост
эндотелия при экспериментальном ожоге роговицы
серной кислотой // Материалы научн. конф., посвя­
щенной 90-летию со дня рождения В. П. Филатова,
Киев. 1965 —С. 19—20.

16. Войно-Ясенецкий В. В. Процесс приживления
роговичного трансплантата при внутричерепном по­
вреждении тройничного нерва // Офтальм. журн. —
1959. — № 3. — С. 170—176.

17. Войно-Ясенецкий В. В. Метаплазия тканей гла­
за при осложненном раневом процессе // В кн.: Усло­
вия регенерации органов и тканей у животных. — М.,
1965 — С. 45—49.

18. Войно-Ясенецкий В. В. Разрастание и изменчи­
вость тканей глаза при его заболеваниях и травмах. —
К.: Вища школа, 1979. — 224 с.

19. Калинина А. В. Глиальные клетки сетчатки ля­
гушки Rana ridibunda Pall // Арх. анат., гист. и эмб-
риол. — 1983. — Т. 84. — № 4. — С. 33—38.

20. Кашинцева Л. Т. Глаукома у больных сахарным
диабетом // Автореф. дис. ... д-ра мед. наук. — М.,
1972.— С. 30.

21. Красновид Т. А., Вит В. В. Повреждение и вос­
становление функции клеток заднего эпителия роговой
оболочки после экстракции катаракты // Офтальмол.
журн. — 1995. — № 3. — С. 158

22. Мальцев Э. В. Хрусталик. — М.: Медицина,
1988.— С. 190.

23. Мальцев Э. В., Павлюченко К. П. Биологичес­
кие особенности и заболевания хрусталика. — Одесса:
Астропринт, 2002. — 445 с.


 

24. Назаренко Н.И., Вит В. В., Бабанина Ю. Д.
Динамика морфологических изменений оболочек гла­
за и прочности склеры после диатермокоагуляции //
Офтальм. журн. — 1981. — № 8. — С. 498—501.

25. Певзнер Л. 3. Биохимические особенности гли­
альных клеток как основа для участия нейроглии в
специфической активности нейронов // В кн.: Функции
нейроглии. — Тбилиси: Мецниерба, 1979. — С. 251 —
265.

26. Певзнер Л. 3. Функциональная биохимия нейро­
глии.—Л.: Наука, 1972.— 200 с.

27. Полунин Г. С, Макаров И., Шеремет Н. Осо­
бенности клинического течения отдельных видов луче­
вых катаракт // Вестн. офтальмол. — 1998. — № 5. —
С. 32—35.

28. Пучкшська Н. О. До питания про морфолопю
Hepeie i нервових закшчень poroeoi оболонки // Ме-
дичн. журн. — 1947. — № 16. — С. 340—356.

29. Пучывська Н. О. Морфолопчш особливост1 нер-
bjb ештелш роговоТ оболонки // В кн.: 36., присвяч.
Пям'ят1 О. В. Леонтовича (1869—1943). — К., 1948. —
С. 142—149.

30. Пучковская Н. А., Войно-Ясенецкий В. В. Вто­
ричные дистрофические и структурные изменения
в переднем отделе глаза. — М.: Медицина, 1985.—
С. 192.

31. Розенфельд И. А. Флюорометрия в офтальмоло­
гии. Обзор литературы // МРЖ. Офтальмология. —
1987. — № 4. —Т. 448.— С. 25—30.

32. Судакевич Д. И. Архитектоника системы внут­
риглазного кровоснабжения. — М.: Медицина, 1971. —
С. 111.

33. Тринчук В. В., Мальцев Э. В., Расина Д. Г.,
Бормусова Э. А.
Гистологическая и гистохимическая
характеристика ожогов роговицы различной степени
тяжести // Тез. докл. 1-го укр. съезда анатомов, гис­
тологов и топографоанатомов.—Винница, 1980.—
С. 127—128.

34. Тринчук В. В., Мальцев Э. В., Расина Д. Г.,
Бормусова Э. А.
Диэлектрические и патогистологичес-
кие параллели моделированных имических ожогов ро­
говой оболочки глаза // Офтальмол. журн. — 1985. —
№2.— С. 115—118.

35. Федоров С. #., Егорова Э. В. Хирургическое
лечение травматических катаракт с интраокулярной
коррекцией. — М.: Медицина, 1985. — 327 с.

36. Федоров С.Н., Ронкина Т. И., Явишева Т. М.
Эндотелий роговицы человека.—М., 1993. — С. 126.

37. Шибкова С. А. О ганглиозных клетках сетчатки
лягушки // Арх. анатомии, гистологии и эмбриоло­
гии. — 1 970. — Т. 9. — № 11. — С. 72—77.

38. Шибкова С. А. О ганглиозных клетках сетчат­
ки селахий // Арх. анатомии, гистологии и эмбриоло­
гии. — 1971. — Т. 60. — №3. — С. 21—28.

39. Школьник-Яррос Е. Г., Калинина А. В. Нейро­
ны сетчатки. — М.: Наука, 1986. — 205 с.

AO.Acharya S., Rodriguez /., Moreira Т. SPACR a novel interphotoreceptor matrix glycoprotein in human retina that interacts with hyaluronan // J Biol Chem. — 1998.— Vol. 273.— P. 31599—31606.

41. Acott T.S., Samples J. R., Bradley J. M. Trabe-
cular re-population by anterior trabecular meshwork
cells after laser trabeculoplasty // Am J Ophthalmol. —
1989.— Vol. 1. —P. 107—112.

42. Adler A. J., Martin K. /. Retinol-bilding in bovine
interphotoreceptor matrix // Biochem Biophys Res Com-
mun—1982.— Vol. 108.— P. 1601 — 1608.

AZ.Ahnelt P.K., Keri C, Kolb H. Identification of pedicles of putative blue sensitive cones in human and primate retina // J Comp Neurol. — 1990. —Vol. 293 — P. 39—53.



Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА


 


44. Ahnelt P. К., Kolb И., Pflug R. Identification of
a.subtype of cone photoreceptor likely to be blue sensi­
tive in the human retina // J Camp Neurol— 1987. —
Vol. 255 (18).— P. 34—40.

45. Ahnelt P., Kolb H. Horizontal cells and cone
photoreceptors in human retina: A Golgi-electron micro­
scopic study of spectral connectivity // J Compar Neu­
rology. — 1994. — Vol. 343. — P. 406—427.

46. Ahnelt P., Kolb H. Horizontal cells and cone
photoreceptors in primate retina: A Golgi-light micro­
scope study of spectral connectivety // J Comp Neu­
rol — 1994. — Vol. 343. — P. 387—405.

M.Aitken D., Friend J., Thoft R. A. Corneal re-epi-thelialization from the conjunctiva // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 1988. — Vol. 29. — P. 224—231.

48. Aizawa K. The depth of the normal anterior
chamber // Acta Soc Ophthalmol.—1958. —Vol. 62.—
P. 2283—2289.

49. Al-Aswad L., Adorante J.S., Erickson К. E. Ef­
fects of cell volume regulators on outflow facility in calf
and human eyes in vitro (Abstract) // Invest Ophthal­
mol Vis Sci. — 1995. — Vol. 36. — P. 3331—3338.

50. Albona /., Purslowb P.P., Karwatowskic W.S.S.,
Eastyd D. L.
Age related compliance of the lamina cri-
brosa in human eyes // Br J Ophthalmol. — 2000. —
Vol. 84.— P. 318—323.

51. Albona J. An investigation into the age-related
changes in the extracellular matrix of the human lamina
cribrosa // PhD thesis. — Bristol: University of Bristol.,
1995.

52. Alcala I., Maisel H. Biochemistry of lens plasma
membranes and cytoskeleton // In The Ocular Lens:
Structure, Function and Pathology / Ed. H. Maisel, Mar­
cel Dekker. — New York, 1985. — 169 p.

53. Allansmith M. R., Kajiyama G., Abelson M. B.
Plasma cell content of main and accessory lacrimal
glands and conjunctiva // Am J Ophthalmol. — 1976. —
Vol. 82 —P. 819—825.

54. Allen D.P., Low P.S., Dola A. Band 3 and an-
kyrin homologues are present in the eye lens: Evidence
for all major erythrocyte membrane components in same
non-erythroid cell // Biochem Biophys Res Commun. —
1987.—Vol. 149—P. 266—273.

bb.Allsopp R.C., Vaziri #., Patterson C, Gold­stein S., Younglai E. V., Futcher A. B. Telomere length predicts replicative capacity of human fibroblasts // Proc Natl Acad Sci. — 1992. — Vol. 89. — P. 10114—10118.

56. Almegard В., Andersson S. E. Outflow facility
in the monkey eye: Effects of calcitonin gene-relat­
ed peptide, cholecystokinin, galanin, substance P and
capsaicin // Exp Eye Res. — 1990. — Vol. 51 —
P. 685—692.

57. Alvarado J. A., Van Horn С Muscle cell types of
the cat inferior oblique // In Lennerstrand G., Bach-y-
Rita P. (eds): Basic Mechanisms of Ocular Motility. —
Oxford Pergamon Press, 1975. — P. 15—45.

58. Alvarado J. A., Yun A.]., Murphy C.G. Juxta-
canalicular tissue in primary open angle glaucoma and
in nonglaucomatous normals // Arch Ophthalmol. —
1986.— Vol. 104.— P. 1517—1525.

59. Alvarado /., Murphy C, luster R. Age-related
changes in the basement membrane of the human cor­
neal epithelium // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1983.—
Vol. 24.— P. 1015—1021.

60. Alvarado /., Murphy C, luster R. Trabecular
meshwork cellularity in primary open angle glaucoma
and nonglaucomatous normals // Ophthalmology. —
1984.—Vol. 91. —P. 564—572.

61. Alvarado /., Murphy C, Polansky J. Age-related
changes in trabecular meshwork cellularity // Invest
Ophthalmol Vis Sci. — 1981. — Vol. 21. — P. 714—721.


 

62. Amalric P. Choroidal vessel occlusive syndromes
clinical aspects // Trans Am Acad Ophthalmol Otolaryn-
gol. — 1973. — Vol. 77. — P. 291—299.

63. Amalric P. Le territoire chorio-retinien de l'artere
ciliaire longue posterieure. Etude clinique // Bull Soc
Ophtalmol Fr. — 1963. — Vol. 63. — P. 342—350.

64. Ambati /., Canakis C.S., Miller G. V., Gragou-
das E. S.
Diffusion of high molecular weight compounds
through sclera // Invest Ophthalmol Vis Sci. — 2000. —
Vol. 41. —P. 1181 — 1185.

65. Anderson D. R. Scanning electron microscopy of
primate trabecular meshwork // Am J Ophthalol. —
1969.— Vol. 71. —P. 90—98.

66. Anderson D. R. Ultrastructure of human and
monkey lamina cribrosa and optic nerve head // Arch
Ophthalmol. — 1969. — Vol. 82. — P. 800—807.

67. Anderson D. R. Ultrastructure of the optic ner­
ve head // Arch Ophthalmol. — 1970. — Vol. 83.-
P. 63—68.

68. Anderson D. R., Braverman S. Re-evaluation of
the optic disc vasculature // Am J Ophthalmol. —
1976.— Vol. 82.— P. 165—172.

69. Anderson D. R., Hoyt W.F. Ultrastructure of
intraorbital portion of human and monkey optic nerve //
Arch Ophthalmol. — 1969.— Vol. 82. — P. 506—511.

70. Anderson D. R., Hoyt W.F., Hogan M. J. The
fine structure of the astroglia in the human optic nerve
and optic nerve head // Trans Am Ophthalmol Soc. —
1969.—Vol. 65.— P. 275—282.

7'1. Anderson D. R., Trobe J.D., Hood T. W. Optic tract ingury after anterior temporal lobectomy // Oph­thalmology. — 1989. — Vol. 96. — P. 1065—1070.

72. Anderson S., Sundar Raj S., Fife D., Wessel H.,
Sundar Raj N.
Developmentally regulated appearance
of spliced variants of type XII collagen in the cornea
// Invest Ophthalmol Vis Sci. — 2000. — Vol. 41.-
P. 55—63.

73. Andley U., Hebert /., Morrison A. et al. Modu­
lation of lens epithelial cells proloferation by enhan­
ced prostaglandin synthesis after UVB exposure // In­
vest Opthalmol Vis Sci. — 1994. — Vol. 35, № 2.-
P. 375—381.

74. Andres К. Н. Morphological criteria for the differ­
entiation of mechanoreceptors in vertebrates // In: Sym­
posium Mechanorezeption Abhdlg Rhein Westf Akad
Wiss / Ed. J. Schwartzkopff, Westdeutscher Verlag, Op-
laden, 1974.— Vol. 53.— P. 135—141.

75. Anthony T. L, Pierce K. L., Stamer W. D., Re­
gan J. W.
Prostaglandin F2 alpha receptors in the hu­
man trabecular meshwork // Invest Ophthalmol Vis
Sci.— 1998.— Vol. 38.— P. 1222—1228.

76. Araki M. Observations on the corrosion casts of
the choriocapillaris at the posterior pole // Acta Soc
Ophthalmol Jpn. — 1977. — Vol. 80. — P. 315—322.

77. Archer D., Krill A., Newell F. Fluorescein studies
of normal choroidal circulation // Am J Ophthalmol. —
1977.— Vol. 69.— P. 543.

78. Archer S. Molecular biology of visual pigments //
In «Neurobiology and Clinicak Aspects of the Outer
Retins / Eds. M. B. A. Djamgoz, S. N. Archer, S. Valler-
ga. — Chapman and Hall London, 1995.— P. 79—104.

79. Arentsen J. /., Rodrigues M. M., Laitsson P. R.
Histopathology of 150 trabeculectomy specimens in
glaucoma //Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1995.—
Vol. 16.— P. 32—38.

80. Ashton N. Anatomical study of Schlemm's canal
and aqueous veins by means of Neoprene casts II Aque­
ous veins // Br J Ophthalmol. — 1952.—Vol. 36.—
P. 265—273.

81. Ashton N. Anatomical study of Schlemm's canal
and aqueous veins by means of Neoprene casts I Aque-


Литература



 


ous veins // Br J Ophthalmol. -1951. —Vol. 35.— P. 291-299.

82. Ashton N. Observations on the choroidal cir­
culation // Br J Ophthalmol. — 1961.—Vol. 54.—
P. 1084—1091.

83. Ashton N., Brini A., Smith R. Anatomical studies
of the trabecular meshwork of the normal human eye //
Br J Ophthalmol. — 1956. Vol. 40. — P. 257—262.

84. Ashton N., Cunha-Vaz J. G. Effect of histamine
on the permeability of the ocular vessels // Arch Oph­
thalmol. — 1965. — Vol. 73.—P. 211—217.

85. Ashton N., Smith R. Anatomical study of
Schlemm's canal and aqueous veins by means of Neo-
prene casts III Arterial relations of Schlemm's canal //
Br J Ophthalmol. — 1953.— Vol. 37. — P. 577—583.

86. Aster J.C., Brewer G., Maisel H. The 4. Mike
proteins of the bovine lens: Spectrin-binding proteins
closely related in structure to red blood cell protein 4.1
// J Cell Biol. — 1986. — Vol. 103. — P. 115—122.

87. Aurell G., Holmgren H. Uber das Vorkummen
von elastischen Fasern in der Hornhaut des Auges //
Z Zellforsch Mikrosk Anat. — 1941. — Vol. 50.—
p. 446—453.

8>8.Ayajiki K-, Kindermann M., Hecker M. Intracel-lular pH and tyrosine phosphorylation but not calci­um determine shear stress-induced nitric oxide produc­tion in native endothelial cells // Circ Res. — 1996. — Vol. 78. — P. 750—758.

&9.Ayard S., Weiss J. B. A new look et vitreous humour collagen // Biochem J— 1984.— Vol. 218. — P. 835—840.

90. Baasti S., Mathur U. Unusual intermediate-term
outcome in three cases of limbal autograft transplantation
// Ophthalmology. — 1999. — Vol. 106. — P. 958—963.

91. Bacin F., Kantelip В., Menerath J. M. Barrieres
hemato-oculaires Physiologie. Encicl. Ved. Chir. (Paris-
France), Ophtalmologie, 21020 D 20, 3—1988, 6 p.

92. Balazs E. A., Toth L.Z., Ozanics V. Cytological
studies on the developing vitreous as related to the
hyaloid vessel system // Graefes Arch Klin Exp Ophthal­
mol.—1980. -Vol. 213.— P. 71—78.

93. Banerjee R., Lund R. D. A role for microglia in
the maintenance of photoreceptors in retinal transplants
lacking pigment epithelium // J Neurocytol. — 1992. —
Vol. 21. —P. 235—243.

94. Barak M.H., Weinreb R. N., Ryder M.I. Quan­
titative assessment of cynomolgus monkey trabecular
cell phagocytosis and adsorption // Curr Eye Res. —
1988.— Vol. 7.— P. 445—452.

95. Barany E.H., Berrie C. P., Birdsall. N.J.M.
The binding properties of the muscarinic receptors of the
cynomolgus monkey ciliary body and the response to
the induction of agonist subsensitivity // Br J Pharma­
col. — 1982. — Vol. 77. —P. 731—738.

96. Bassnett S. Coincident loss of mitochondria and
nuclei during lens fiber differentiation // Dev Dyn. —
1992. —Vol. 194.— P. 85—92.

97. Bassnett S. Mitochondrial dynamics in differenti­
ating fiber cells of the mammalian lens // Curr Eye
Res. — 1992.—Vol. 11. — P. 1227—1234.

98. Baud С A., Balvoine C. The intimate structu­
re of Descemet's membrane and its pathological deri­
vatives // Br. J Ophthalmol.—1953.— Vol. 126. —
P. 290—295.

§9.Baycott B.B., Hopkins J. M. Microglia in the retina of monkey and other mammals its distinction from other types of glia and horizontal cells // Neurosci. — 1981. —Vol. 6.— P. 679—688.

100. Beck R.W., Savino P.J., Repka M.X. Optic disc structure in anterior ischemic optic neuropathy // Ophthalmology. — 1984.— Vol. 91 — P. 1334—1340.


 

101. Beckers H. J. M., Klooster J., Vrensen G. F. J. M.
Ultrastructural identification of trigeminal nerve endings
in the rat cornea and iris // Invest Ophthalmol Vis
Sci. — 1992. —Vol. 33.— P. 1979—1985.

102. Bednarski A. De l'excavation physiologique du
nerf optique // Arch Ophthalmol. — 1925. — Vol. 42. —
P. 5—11.

103. Behr C. Beitrag zur Anatomie und Klinik des
septalen Gewebes und des Arterieneinbaus im Sehner-
venstamm // A von Graefes Arch Ophthalmol. —
1935.—Vol. 134.— P. 227—234.

104. Bembridge B.A., Crawford G.N.C., Pirie A.
Phase-contrast microscopy of the animal vitreous // Br
J Ophthalmol. — 1952.—Vol. 36. — P. 131 — 138.

105. Ben Sira I., Riva С. Е. Fluorescein diffusion in
the human optic dis // Invest Ophthalmol.— 1975.—
Vol. 14.—P. 205—211.

106. Benedetti E. L., Dunia /., Bentzel C.J. A port­
rait of plasma membrane specializations in eye lens
epithelium and fibers // Biochim Biophys Acta. —
1976.—Vol. 457.— P. 353—360.

107. Benedetti E. L, Dunia I., Ramaekers F.C.S.
Lenticular plasma membranes and cytoskeleton in Mo­
lecular and Cellular Biology of the Eye Lens / Ed.
H. Bloemendal, John Wiley and Sons. — New York,
1981, —P. 137—142.

108. Berger E. Beitrage zur anatomie der zonula zi-
nii. A von // Graefes Arch Klin Exp Ophthalmol. —
1882.— Vol. 28.— P. 28—35.

109. Berman E. R. Biochemistry of the Eye. — New
York: Plenum Press, 1991.—492 p.

110. Bignami A., Dahl D. The radial glia of Muller in
the rat reina and their responce to injury // Exp Eye
Res. — 1979. — Vol. 28. — № 1. — P. 63—69.

111. Bill A. A method to determine osmotically effec­
tive albumin and gammaglobulin concentrations in tis­
sue fluids its application to the uvea and a note on the
effects of capillary «leaks» on tissue fluid dynamics //
Acta Physiol. — 1968. — Vol. 6. — P. 238—247.

112. Bill A. Aspects of physiological and pharmalog-
ical regulation of uveal blood flow // Acta Soc Med
Upsalien. — 1962. —Vol. 67. — P. 122—128.

113. Bill A. Autonomic nervous control of uveal
blood flow // Acta Physiol Scand.—1962. —Vol. 56.—
P. 70—76.

114. Bill A. Blood circulation and fluid dynamics in
the eye //Physiol Rev.— 1975. —Vol. 55. —P. 383—390.

115. Bill A., Svedbergh B. Scanning electron micro­
scopic studies of the trabecular meshwork and the canal
of Schlemm. An attempt to localize the main resistance
to outflow of aqueous humor in man // Acta Ophthal­
mol. — 1972. — Vol. 50. — P. 295—302.

116. Bill A. The 1990 Endre Balazs Lecture: Effects
of some neuropeptides on the uvea // Exp Eye Res. —
1991. —Vol. 53.— P. 3—11.

117. Bill A. The drainage of aqueous humor // Invest
Ophthalmol. — 1975. —Vol. 14.— P. 1—9.

118. Bill A., Barany E.H. Gross facility, facility of
conventional routes, and pseudofacility of aqueous hu­
mor outflow in the cynomolgus monkey // Arch Oph­
thalmol. — 1966. — Vol. 75.— P. 665—672.

119. Bill A., hinder J. Sympathetic control of cereb­
ral blood flow in acute arterial hypertension // Acta
Physiol Scand. — 1976. —Vol. 96. — P. 114—123.

120. Bill A., Tornqvist P., Aim A. Permeability of
the intraocular blood vessels // Trans Ophthalmol Soc
UK. — 1980.—Vol. 100.— P. 332—340.

121. Bird A. C. Bruch's membrane changes with age
// Br J Ophthal. — 1992. Vol. 76. — P. 160—168.

122. Birk D. E., Trelstad R. L. Extracellular compart­
ments in matrix morphogenesis Collagen fibril, bundle,



Глава 3. СТРОЕНИЕ ГЛАЗНОГО ЯБЛОКА


 


lamellar formation by corneal fibroblasts // J Cell Biol. — 1984. — Vol. 99. — P. 2024—2032.

123. Bishop P. N. Identification in vitreous and mo­
lecular cloning of opticin, a novel member of the fa­
mily of leucine-rich repeat proteins of the extracellu­
lar matrix // J Biol Chem. — 2000. — Vol. 275.—
P. 2123—2129.

124. Bishop P. N. Structural macromolecules and
supramolecular organisation of the vitreous gel // Prog
Ret Eye Res. — 2000. — Vol. 19.— P. 323—344.

125. Blakemore W. F. Microglial reaction following
thermal necrosis of the rat cortex An electron micro­
scope study // Acta Neuropathol. — 1972. — Vol. 21. —
P. 11 — 19.

126. Blanks J. C. Morphology of the retina // In
Ryan S. J., Ogden T. E. (eds) Retina St. Louis, CV
Mosby, 1989.— Vol. 1, —P. 37—52.

127. Blatt H. L. Endothelial cell density in relation to
morphology // Invest Ophthalmol Vis Sci.— 1979.—
Vol. 18.— P. 856—859.








Дата добавления: 2014-12-20; просмотров: 736;


Поиск по сайту:

При помощи поиска вы сможете найти нужную вам информацию.

Поделитесь с друзьями:

Если вам перенёс пользу информационный материал, или помог в учебе – поделитесь этим сайтом с друзьями и знакомыми.
helpiks.org - Хелпикс.Орг - 2014-2024 год. Материал сайта представляется для ознакомительного и учебного использования. | Поддержка
Генерация страницы за: 0.087 сек.