5 страница. Рис. 32. Вскрытие рыб, контуры разрезов брюшной стенки (из Schaperclausa, 1979): а — карпа и других карповых; б — форели и лососевых; в — угря


Рис. 32. Вскрытие рыб, контуры разрезов брюшной стенки (из Schaperclausa, 1979): а — карпа и других карповых; б — форели и лососевых; в — угря

вых ямок; два боковых разреза проходят от носовых ямок до заты­лочной области, а четвертый — в области затылка. Сначала прово­дят внешний осмотр оболочки головного мозга, затем его извлека­ют и характеризуют состояние вещества мозга, его кровенаполне­ние и др.

При осмотре скелетной мускулатуры обращают внимание на цвет, консистенцию, наличие кровоизлияний, отека, припухлос­тей, цист паразитов, степень прикрепления к костям.

Патологоанатомические изменения сопоставляют с клинически­ми симптомами, выявляют характерный комплекс признаков основ­ного заболевания и сопутствующие осложнения (болезни), а также используют их для определения главной и непосредственной причи­ны гибели рыб. В сомнительных случаях данные вскрытия уточняют с помощью гистологического исследования патматериала.


Обработку патматериала проводят общими методами гистологи­ческой техники. По нашему опыту, кусочки органов рыб лучше зали­вать в целлоидин-парафин, а жабры, кожу и плавательный пузырь — в целлоидин. Срезы окрашивают общепринятыми методами.

ПРАВИЛА ОТБОРА И ПЕРЕСЫЛКИ МАТЕРИАЛОВ ДЛЯ ЛАБОРАТОРНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ

Пробы воды берут в нескольких точках водоема с таким расче­том, чтобы собранные образцы отражали гидрохимическое состоя­ние водоема или загрязненность его отдельного участка (зоны гибе­ли рыб, места впадения ручья или сбросного канала, района интен­сивного поверхностного стока и т.д.), а также в незагрязненном участке (выше по течению). В прудах и других проточных емкостях берут пробы на вытоке воды.

Пробы воды (не менее 2 л) отбирают батометром из поверхност­ных (на глубине 50 см) и придонных слоев в чистые стеклянные или полиэтиленовые бутылки (см. рис. 20). Перед заполнением посуду ополаскивают 2—3 раза исследуемой водой. В тех случаях, когда время транспортирования пробы составляет более 1 сут, их реко­мендуется фиксировать различными консервантами в зависимости от целей исследования. Зимой воду при транспортировании следует утеплять, чтобы исключить ее замерзание.

Пробы грунта (массой 2 кг) берут также из разных зон водоема дночерпателем Экмана или Кирпичникова. Грунт сушат на воздухе и упаковывают в широкогорлые банки или полиэтиленовые мешки (рис. 33).



Рис. 33. Приспособления для взятия проб грунта и планктона: А — скребок; Б — дночерпатель; В — планктонная сетка

Бентосные организмы (хирономиды, олигохеты, моллюски) в ко­личестве 100—150 г отмывают от ила водой из водоема.


Планктон собирают планктонной сеткой, фильтруя такое коли­чество воды, которое необходимо для получения около 50 г живой массы планктона.

Больных или подозрительных по заболеванию рыб доставляют в ветеринарную лабораторию живыми. Для исследования берут 10— 15 рыб на различных стадиях болезни.

Живых рыб перевозят в молочных бидонах или других емкостях, заполненных на 3/4 объема водой из того же водоема, откуда взята проба, или водой из артезианской скважины.

Летом при длительном транспортировании воду с рыбой посте­пенно охлаждают до температуры 12—15 °С, добавляя мелкие ку­сочки льда. Чтобы не вызывать у рыб температурного шока, нельзя допускать перепад температуры воды исходного водоема и транс­портной емкости более 5—7 °С.

ь случае невозможности выполнить эти условия отбирают патматериалы от больных рыб и соответствующим способом кон­сервируют. Для химико-токсикологического анализа пригодны снулая рыба или свежие трупы, которые отправляют в охлажден­ном, замороженном виде или консервируют 70°-ным спиртом.

Кусочки органов для бактериологических и вирусологических исследований отбирают стерильно, замораживают или консерви­руют 40—50%-ным раствором глицерина в кипяченой воде или физиологическом растворе. Кровь, экссудат и другой жидкий пат-материал доставляют в запаянных пастеровских пипетках. Пробы для микологических исследований консервируют в растворе анти­биотиков (пенициллина или стрептомицина по 100 ЕД/мл раство­ра). В исключительных случаях делают посевы в лаборатории ры­боводного хозяйства.

Кровь для исследований берут пастеровской пипеткой из хвос­товых сосудов (артемии и вены) или из сердца с соблюдением пра­вил асептики и антисептики (рис. 34). Взятую кровь используют для посева, приготовления мазков, гематологических и биохими­ческих исследований. Цельную кровь стабилизируют гепарином (1000 ЕД/мл) или лимоннокислым натрием. Сыворотку крови по­лучают общепринятым методом, помещают в стерильные запаян­ные ампулы, а летом консервируют 5%-ным раствором фенола (1—2 капли на 1 мл сыворотки) или тиомерсалом из расчета 10 мг препарата на 10 мл сыворотки. Отобранные жидкие материалы пе­ревозят в термосе со льдом.

Материал для гистологичес­ких исследований берут от по­гибших и вынужденно убитых рыб. Мелких рыб (мальки и се-

Рис. 34. Места взятия крови из хвостовых сосудов карпа:


1 — у сеголетков; 2—у карпов старшего возраста


голетки) после вскрытия брюшной полости фиксируют целиком, а от крупных особей берут органы или кусочки органов размером 2 х 3 см и толщиной 0,5—1,0 см. Кусочки из пораженных органов и тканей вырезают так, чтобы были захвачены нормальные и изме­ненные участки. Независимо от степени поражения берут кусочки кожи с подлежащей мускулатурой, жабр, печени, почек, селезенки, сердца, кишечника, плавательного пузыря, головного мозга. Ки­шечник перед фиксацией осторожно вскрывают или делают на нем несколько надрезов, чтобы фиксирующая жидкость проникла в его полость. Головной мозг осторожно извлекают целиком после вскрытия черепной коробки. Подлежащий исследованию материал помещают в стеклянные банки и фиксируют 10%-ным нейтраль­ным формалином, жидкостью Буэна или Карнуа.

С пораженных органов собирают паразитов и консервируют раз­ными способами в зависимости от их систематического положения и размеров. Для определения простейших — инфузорий, жгутико­носцев — готовят мазки соскобов из жабр и кожных покровов на предметных стеклах, подсушивают их на воздухе и хранят в бумаге или фиксируют жидкостью Шаудина 15—20 мин. Из цист миксо-споридий также готовят мазки на предметных стеклах, которые сра­зу заключают в глицерин-желатину.

Гельминтов собирают с органов в солонки или чашки Петри, промывают от слизи водой или физиологическим раствором и вы­держивают в них до гибели паразита. Моногенетических сосальщи­ков сразу заключают в глицерин-желатину на предметных стеклах или фиксируют в 4%-ном растворе формалина. Трематод, ленточ­ных червей и скребней фиксируют 70°-ным спиртом между стекла­ми так, чтобы они расправились, а у скребней вышел хоботок; нема­тод и личинок цестод консервируют в жидкости Барбагалло. Пара­зитических рачков фиксируют в 70°-ном спирте или 4%-ном фор­малине, пиявок — в 4%-ном формалине, не раздавливая, и глохидий — в 70°-ном спирте.

Отобранные материалы подробно описывают, этикетируют, упаковывают в водонепроницаемую тару, опечатывают и высылают с нарочным в ветеринарную лабораторию или другое учреждение, где имеются возможности для исследования. В сопроводительном письме сообщают данные обследования водоема, указывают пред­полагаемый диагноз и какие лабораторные исследования необходи­мо провести.

БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКИЕ И ВИРУСОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Для доказательства бактериальной или вирусной этиологии бо­лезней рыб необходимо выделить возбудителя из организма боль­ных рыб, идентифицировать его по культурально-морфологичес-ким, антигенным и биологическим признакам, воспроизвести бо­лезнь на здоровых рыбах, повторно выделить (реизолировать) воз­будителя от экспериментальных животных. Все эти исследования


проводят по общепринятой схеме с учетом особенностей организма рыб и возбудителей болезней (схема I, табл. 11).

Схема I. Лабораторная диагностика бактериальных болезней рыб Патологический материал от больных рыб

1. Заражение рыб того же I. Капельная РА со
вида смесью сывороток

2. Клинические признаки 2. Капельная РА с моно-

валентной сывороткой

3. Реизоляция возбудите- 3. Пробирочная РА с

ля моновалентной сыво-

роткой

Бактериологические посевы проводят вначале с пораженных уча­стков кожи, мышц (язвы, абсцессы и др.), жаберной ткани, крови и асцитной жидкости, а после вскрытия полости — обязательно с пече­ни, почек или селезенки. Материал для вирусологических исследова­ний отбирают из органов и тканей, где концентрируется вирус, а при малоизученных болезнях — из наиболее пораженных органов.

Язвы перед отбором патологического материала промывают сте­рильным физиологическим раствором; содержимое абсцессов, фу­рункулов, асцитной жидкости набирают пастеровской пипеткой после прижигания места прокола.

Для асептического вскрытия рыбу обездвиживают, фиксируют препаровальными иглами на деревянной или пробковой доске. Туловище с левой стороны освобождают от слизи и чешуи, удаля­ют грудной и брюшной плавники, дезинфицируют 70°-ным спир­том или фламбируют спиртовым тампоном. Брюшную стенку от­секают стерильными ножницами полулунным разрезом от ануса к жаберной крышке. Патматериал с паренхиматозных органов от­бирают стерильно пастеровскими пипетками или бактериологи­ческой петлей.

Первичные бактериологические посевы проводят на МПБ, МПА и некоторые дифференциальные среды (например, кровяной агар, Китт—Тароцци). Патологический материал для вирусологи-



 


козов культивируют на МПА с добавлением 1 % сыворотки крупно­го рогатого скота, а также на глюкозо-дрожжевом агаре.

Сапролегниевые грибы хорошо растут на стерилизованных ки­пячением семенах конопли и льна, помещенных в агаровые пласти­ны (1,5%-ный агар на воде), которые раскладывают в чашках Петри. Грибок растет при комнатной температуре в виде ватообразных ко­лоний. Его также культивируют на МПА, агаре Чапека и Сабуро, для чего вырезают из них небольшие блоки, засевают культурой и раскладывают в чашки Петри.

ПОСТАНОВКА БИОЛОГИЧЕСКИХ ПРОБ

В ряде случае для установления окончательного диагноза на ин­фекционную болезнь, а также при решении вопроса о снятии ка­рантина или карантинных ограничений с хозяйства ставят биологи­ческие пробы. При постановке их с целью определения патогеннос-ти возбудителей используют чистые культуры бактерий, вирусов, грибов. Кроме того, применяют нативные суспензии и взвеси, при­готовленные из различных органов и тканей больных или подозре­ваемых в заражении рыб.

Биопробы ставят в аквариумах, ваннах или бассейнах, создавая в них оптимальные условия для жизни рыб и размножения возбуди­телей. Наблюдения ведут ежедневно, учитывают число погибших рыб, клинические признаки болезни и характер патологоанатоми-ческих изменений. Продолжительность опытов устанавливают с учетом инкубационного периода и длительности течения заболева­ния в естественных условиях. В опыты отбирают восприимчивых к данному заболеванию рыб из благополучного хозяйства. В каждой серии для заражения и контроля берут по 10 рыб.

При вирусных болезнях в качестве инфекционного материала берут свежеприготовленную вируссодержащую суспензию культу­ры клеток или безбактериальные фильтраты суспензий органов больных рыб. Количество вируссодержащего материала и способ заражения подбирают индивидуально для каждого заболевания. Материал вводят внутрибрюшинно, контактным методом, ороше­нием жабр или выдерживанием рыб в воде, содержащей вирус. Па­раллельно ставят контрольные опыты.

Для подтверждения бактериальной природы болезни испыты­вают чистые культуры. Здоровых рыб заражают 2-суточными буль­онными культурами внутрибрюшинно или внутримышечно в до­зах 0,1—0,2 мл (рис. 35). Молодые или старые культуры для био­пробы непригодны, так как у них меняются вирулентные свойства. Музейные штаммы перед опытом пассируют через восприимчивых рыб.

Для ускорения исследований предварительно патогенность оп­ределяют по ДНК-азной активности выделенных культур.

При постановке биологической пробы для диагностики мико­зов используют нативный материал, в котором содержится возбу-


 

Рис. 35. Внутрибрюшинное заражение рыб и введение лекарственных препа­ратов: а — фиксация рыб; б — место инъекций

дитель на всех стадиях развития, или выращивают патогенные грибы на специальных пита­тельных средах до стадий, при­годных для заражения. Дозу вводимого патологического ма­териала в каждом конкретном случае определяют титрованием на восприимчивых рыбах.

Биологическая проба счита­ется положительной, если у 80 % зараженных рыб проявля­ется комплекс клинических

признаков и патологоанатомических изменений болезни и погиба­ет не менее 50 % заболевших рыб при полном сохранении их в кон­троле, а также при выделении исходных возбудителей.

По окончании опытов воду в аквариумах обеззараживают, созда­вая в ней 4%-ную концентрацию формалина или 10%-ную концен­трацию суспензии хлорной извести. Через 1 ч воду спускают в кана­лизационную сеть, а рыб утилизируют. Весь инвентарь и посуду, бывшие в контакте с больной рыбой, дезинфицируют в 4%-ном растворе формальдегида в течение 1 ч.

При завершении биологической пробы в бетонированных бас­сейнах, земляных садках, карантинных прудах проводят дезинфек­цию воды хлорированием, доводя содержание свободного хлора в воде до 4—5 мг/л. Через 24 ч воду пропускают через известковый фильтр (используя только свежую негашеную известь). После этого ложе прудов дезинфицируют негашеной (10 т/га) или хлорной из­вестью (3 т/га) и оставляют без воды в течение 1 мес.

В случае, если ставится вопрос о снятии карантина или других ограничений, биопробу проводят непосредственно в прудах хозяй­ства согласно инструкции по борьбе с соответствующим заболева­нием.

ГЕМАТОЛОГИЧЕСКИЕ И БИОХИМИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Кровь рыб четко реагирует на воздействие различных патоген­ных факторов: неблагоприятных условий среды, токсикантов, воз­будителей заразных болезней и т. д. По изменениям крови можно су­дить о характере патологических процессов, происходящих в орга­низме рыб. Результаты гематологических и биохимических иссле­дований крови относятся к дополнительным и позволяют уточнить диагноз болезни.



Основными гематологическими показателями, используемы­ми при диагностике болезней рыб, являются: определение коли­чества эритроцитов и лейкоцитов, уровня гемоглобина, скорости оседания эритроцитов (СОЭ) и выведение лейкограммы. Из био­химических показателей наиболее часто определяют содержание в крови сахара, общего белка и его фракций, активность основных ферментов (каталазы, пероксидазы, ацетилхолинэстеразы и мно­гих других).

Для исследования крови рыб применяют те же методики, что и для теплокровных животных, с учетом ряда особенностей, связан­ных с клеточным составом, физико-химическими свойствами кро­ви рыб и др. Активность ферментов рыб определяют при темпе­ратуре 24-26 "С.

Кровь у рыб берут из хвостовых сосудов (артерии и вены) или из сердца с помощью пастеровских пипеток или шприца с максималь­но толстой иглой. Предварительно их орошают раствором гепарина или лимоннокислого натрия (цитрата натрия).

Место укола протирают от слизи сухим ватным тампоном, а по­том смоченным 70°-ным спиртом. При взятии крови из сердца дела­ют укол между грудными плавниками в месте прохождения белой линии под углом 90° до упора в позвоночник. При взятии крови из хвоста делают укол позади анального плавника, предварительно удалив его ножницами. Вращательными движениями иглы или пас­теровской пипетки прокалывают кожу и под прямым углом продви­гают их до упора в позвоночник. Кровь в обоих случаях легко идет по капилляру пипетки.

Для определения количества эритроцитов и лейкоцитов кровь на­бирают в смеситель меланжера, используемого для подсчета эрит­роцитов млекопитающих, до метки 0,5 или 1 и насасывают жид­кость для окрашивания и разведения крови до метки 101 (раствор А: нейтральрот — 25 мг; хлорид натрия — 0,6 г, вода дистиллирован­ная — 100 мл; раствор Б: кристаллвиолет — 12 мг, натрий лимонно­кислый — 3,8 мг; формалин — 0,4 мл, вода дистиллированная — 100 мл). Раствор А набирают до половины расширения смесителя, раствор Б —до метки 101. Готовят эти растворы непосредственно перед исследованием; хранить их можно в холодильнике не более 1 нед. Под действием растворов ядра лейкоцитов окрашиваются в фиолетово-оранжевый цвет, эритроцитов — в синий цвет; видны контуры клеток.

После наполнения снимают резиновую трубку со смесителя, захватывают его между большим и средним пальцами и сильно встряхивают 2—5 мин, после чего выпускают из капилляра 3 капли жидкости, а 4-й каплей заряжают счетную камеру.

Принцип метода сводится к подсчету форменных элементов крови (эритроцитов, лейкоцитов) в камере Горяева. Сначала под малым увеличением микроскопа находят сетку и устанавливают равномерность распределения клеток, а затем подсчитывают их. Эритроциты считают в 5 квадратах (80 малых квадратов), располо-


ники, плавательный пузырь, половые железы, мышцы, головной и спинной мозг, хрящевая ткань.

При наружном осмотре обращают внимание на наличие крово­излияний, язв, припухлостей, черных пятен на разных участках тела рыб, собирают всех видимых крупных эктопаразитов. Для об­наружения микроскопических организмов с поверхности тела, плавников соскабливают скальпелем слизь, помещают ее на пред­метное стекло, смешивают с несколькими каплями водопровод­ной воды и рассматривают при малом и среднем увеличениях мик­роскопа. В них находят жгутиконосцев, инфузорий, споровиков, моногеней.

Из носовых ямок пипеткой при многократном промывании их водой извлекают слизь, после чего микроскопируют. В слизи могут быть найдены инфузории, слизистые споровики, личинки трема­тод, пиявки,рачки.

Для исследования жаберного аппарата удаляют жаберные крыш­ки, вырезают жаберные дуги с жаберными лепестками и помещают на препаровальные стекла, смачивают водой и рассматривают пер­воначально под лупой. У мелких рыб жаберные дуги с лепестками, у крупных — отделенные от дуг лепестки компрессируют между дву­мя стеклами с добавлением воды. Микроскопически исследуют со-скобы тканей с жабр при малом и среднем увеличениях микроско­па. На жабрах можно обнаружить простейших, моногеней, яйца сангвиникол, рачков и др.

Глаза извлекают из глазных впадин, помещают на предметное стекло и вскрывают острыми ножницами белочную оболочку. Стекловидное тело и хрусталик компрессируют между двумя пред­метными стеклами и просматривают под микроскопом. При этом часто обнаруживают личинок диплостом.

Для исследований на наличие трипанозом и трипаноплазм кровь берут пастеровской пипеткой из сердца или хвостовой вены. Каплю крови наносят на обезжиренное предметное стекло и добавляют каплю лимоннокислого натрия (цитрата натрия) для предотвраще­ния свертывания, накрывают покровным стеклом, края которого замазывают вазелином, и микроскопируют.

Вскрывают брюшную полость дугообразным разрезом от аналь­ного отверстия к основанию левого грудного плавника. Боковую стенку отворачивают пинцетом и осматривают брюшную полость, обращая внимание на наличие ремнецов, нематод, а под серозными покровами и в брыжейке — на цисты и капсулы, содержащие личи­ночные стадии ленточных и круглых червей, миксоспоридий и др.

Сердце извлекают из сердечной полости, помещают на стекло, вскрывают, добавляют немного физиологического раствора и раз­давливают другим стеклом. В нем обнаруживают сангвиникол, цис­ты миксоспоридий и др.

Печень, поджелудочную железу, селезенку, почки исследуют по одинаковой методике. Сначала проводят наружный осмотр этих ор­ганов, а затем их разрезают на кусочки, компрессируют и микро-


скопируют. Для исследования желчного и мочевого пузырей их по­мещают на стекло, вскрывают и собирают содержимое, после чего микроскопируют. В отдельных случаях делают соскобы со слизис­тых оболочек пузырей и также микроскопируют. Указанные органы являются местом обитания личинок гельминтов, многих видов спо­ровиков и других паразитов.

В плавательном пузыре исследуют стенки и полость, в которых могут быть обнаружены миксоспоридий, личинки филометроиде-

сов.

Половые органы исследуют компрессорным методом. В них мо­гут локализоваться миксоспоридий, плероцеркоиды лентецов. В же­лудочно-кишечном тракте исследуют несколько отрезков. Обнару­женных крупных гельминтов собирают и помещают в физиологи­ческий раствор. Содержимое кишок соскабливают скальпелем и исследуют компрессорно.

Для исследования мышц с рыбы снимают кожу и осматривают мышцы снаружи. Могут быть обнаружены личинки возбудителя чернопятнистого заболевания. Затем острым скальпелем разрезают мышцы на тонкие пластинки толщиной 3—5 мм, которые просмат­ривают невооруженным глазом, а затем компрессируют и исследу­ют под микроскопом.

Головной мозг извлекают из черепной коробки и помещают на стекло, готовят раздавленные препараты. Мозговую ткань просмат­ривают под микроскопом частями. Для исследования спинного моз­га перерезают позвоночник в задней части, в канал вводят проволоку, извлекают содержимое на стекло и исследуют компрессорно.

Исследование хрящевой ткани особенно важно в форелевых хозяйствах, неблагополучных по вертежу. Споры возбудителя это­го заболевания локализуются в слуховых капсулах и в межпозво­ночных хрящах. Отделяют кости и хрящи головы, очищают от мышц позвоночник, измельчают их на мелкие кусочки, смачива­ют водой и частями исследуют под микроскопом при среднем уве­личении.

Кроме исследования паразитов в живом и естественном виде на нативных препаратах проводят сбор и фиксацию материалов для последующей окраски, более подробного определения видов, при­готовления постоянных препаратов. Особенно это важно при обна­ружении редких или новых видов паразитов.

Простейших окрашивают по Романовскому — Гимзе, метилено-вым синим или железным гематоксилином. Для окраски трематод и цестод применяют квасцовый кармин. Моногенетических сосаль­щиков, миксоспоридий заключают в глицерин-желатину, замазы­вают сухие края покровных стекол бальзамом или черным лаком и хранят. Скребней и рачков также не красят, а для приготовления постоянных препаратов просветляют и заливают в бальзам. Окрас­ку и заключение паразитов рыб проводят по общепринятым в пара­зитологии методикам (см. специальные руководства).



ТОКСИКОЛОГИЧЕСКИЕ ИССЛЕДОВАНИЯ

Отравления рыб диагностировать довольно сложно, так как они вызываются многочисленными ядовитыми веществами, часто возникают внезапно и проявляются недостаточно специфичными признаками. Поэтому диагноз ставят комплексно на основании данных токсикологического обследования водоема, клинико-ана-томических и разнообразных лабораторных исследований (см. схему II).

Токсикологическое обследование водоемов, проведение клини­ческих исследований и патологоанатомического вскрытия рыб про­водят теми же методами, что и при других болезнях рыб. В группу обязательных относят также органолептические, гидрохимические и химико-токсикологические исследования воды, грунта, органов рыб, беспозвоночных животных и растительности на наличие пред­полагаемого ядовитого вещества. В зависимости от показаний до­полнительно проводят биологические, гематологические, биохи­мические, бактериологические, вирусологические и паразитологи-ческие исследования. Они необходимы для установления характера патологического процесса и дифференциальной диагностики ток­сикозов от заразных болезней рыб.

При оценке результатов комплексных диагностических иссле­дований необходимо учитывать следующие особенности токсико­зов рыб.

Обследование водоемов проводят комиссионно, с участием спе­циалистов ветеринарной службы, органов рыбоохраны, санэпидем­станций и представителей местных администраций. При опросе очевидцев и личном осмотре водоемов важно определить участки наибольшей концентрации больных и погибших рыб, уточнить время появления, длительность и характер течения заболевания, видовой и возрастной состав пораженных рыб и других гидроби-онтов. Учитывают и обследуют при необходимости потенциальные источники поступления сточных вод: промышленные, комму­нально-бытовые и сельскохозяйственные объекты, применение пестицидов и удобрений и поступление их с поверхностным сто­ком. Обязательно анализируют сопутствующие экологические факторы: перепады температуры воды, осадки, паводки и другие метеорологические условия. На месте определяют температуру, рН, прозрачность, запах, окраску воды, содержание в воде кислоро­да, отбирают пробы для полного гидрохимического анализа.

По клиническому течению различают острые и хронические ток­сикозы, которые отличаются от других болезней рядом признаков.

Острые отравления возникают внезапно; для них характерны кратковременное течение, массовая гибель разных видов и возраст­ных групп рыб, ракообразных, моллюсков, лягушек и других гидро-бионтов. В клинической симптоматике их преобладает нервно-па­ралитический синдром, проявляющийся комплексом таких при­знаков, как нарушение возбудимости, потеря равновесия и рас-



стройство координации плавания рыб, тремор мускулатуры и судо­рожное состояние, полная потеря рефлексов, депрессия и агония. Обращают внимание на последовательность этих стадий и зависи­мость проявления симптомов от тяжести отравления.

Хронические токсикозы отличаются длительным течением, со­провождаются постепенной гибелью рыб и проявляются чаще в стертой форме или бессимптомно. Для лабораторной диагностики используют показатели, отражающие избирательное действие ядо­витых веществ. Например, для отравления фосфорорганическими и некоторыми карбаматными пестицидами характерно сильное уг­нетение активности ацетилхолинэстеразы (АХЭ) крови и головного мозга. Производные мочевины, гербициды группы 2,4-Д вызывают гипохромную или гемолитическую анемию, а нитриты и анили-ды — метгемоглобинемию. Полезны бывают и другие биохимичес­кие показатели, диагностическая ценность которых различна.

Патологоанатомическому вскрытию подвергают погибших и живых рыб с клиническими признаками отравления. В первую очередь обращают внимание на трупное окоченение и степень разложения трупов, по которым определяют примерные сроки ги­бели рыб. Следует учитывать, что скорость разложения трупов за­висит от температуры воды и наиболее четко определяется по со­стоянию жаберного аппарата. При температуре 20 °С изменения жабр происходят примерно в следующие сроки: в начальной ста­дии (1—6 ч) бледнеют кончики жаберных лепестков, через 10—12 ч жабры приобретают серо-белую окраску, рисунок их сглаживает­ся, а через 1 —2 сут мягкие ткани легко соскабливаются до обнаже­ния жаберных лучей. Трупы рыб в это время размягчаются, мыш­цы легко отделяются от костей.

Трупное окоченение гораздо сильнее выражено и быстрее насту­пает при отравлении нервно-паралитическими ядами (пестицида­ми, органическими соединениями), чем веществами наркотическо­го и местно-раздражающего действия. Кислоты и тяжелые металлы в высоких концентрациях коагулируют слизь. Она становится гус­той, творожистой, плохо отделяется. Щелочи, щелочно-земельные металлы, наоборот, разжижают ее. Она легко снимается или смыва­ется с тела рыб.

При острых отравлениях ядами местно-раздражающего дей­ствия (щелочами, кислотами, тяжелыми металлами, аммиаком, хлором и др.) на поверхности тела, плавниках, жабрах часто встре­чаются точечно-пятнистые или полосчатые кровоизлияния, помут­нение и даже разрушение роговицы глаз. В то же время резорбтив-ные яды не вызывают значительной местной реакции. Им свой­ственно общее действие, которое выражается нарушением крово­обращения, застойной гиперемией, цианозом, дистрофическими изменениями и иногда отеком внутренних органов. Но выраженное пучеглазие, ерошение чешуи и особенно брюшная водянка (асцит) встречаются гораздо реже, чем при инфекционных заболеваниях.


Важно также заметить, что при большинстве токсикозов по­вреждаются жабры в разных формах: застой крови, цианоз, крово­излияния, токсический отек, дистрофия и некроз поверхностного эпителия и глубоких тканей. Характер и тяжесть этих изменений зависят от агрессивности химического вещества и его концентра­ции.

Картина хронических отравлений менее характерна, чаще про­является снижением упитанности рыб, анемией жабр, внутренних органов, атрофией печени, гидратацией мускулатуры и др. Для уточнения особенностей патологических процессов и дифферен­циации токсикозов от других болезней проводят гистологические исследования.








Дата добавления: 2016-01-07; просмотров: 2175; ЗАКАЗАТЬ НАПИСАНИЕ РАБОТЫ


Поиск по сайту:

При помощи поиска вы сможете найти нужную вам информацию.

Поделитесь с друзьями:

Если вам перенёс пользу информационный материал, или помог в учебе – поделитесь этим сайтом с друзьями и знакомыми.
helpiks.org - Хелпикс.Орг - 2014-2023 год. Материал сайта представляется для ознакомительного и учебного использования. | Поддержка
Генерация страницы за: 0.026 сек.